DE3034273C2 - - Google Patents

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Description

Der Ausdruck "natürliches, unlösliches Kollagen", wie er hier verwendet wird, bedeutet Kollagen, das in wäßriger Alkali- oder sonstiger anorganischer Salzlösung nicht gelöst werden kann ohne chemische Modifizierung und umfaßt Häute (Felle und Leder), Spaltleder u. a. Außenhäute von Säugetieren oder Reptilien. Insbesondere bezieht sich "natürliches, unlösliches Kollagen" auf das Korium, die Zwischenschicht der Haut von Rindern zwischen der Haarseite und der Fleischseite.
Kollagen bildet das Bindegewebe und ist das hauptsächliche Faserprotein bei höheren Wirbeltieren. Kollagen liegt in natürlichem Zustand in Form einer dreifachen Helix (Tripel-helix) vor mit konstanter Periodizität zwischen den drei parallel laufenden Ketten. Die Konfiguration der Tripel-helix von Kollagen wird manchmal als Faser bzw. Fibrille bezeichnet und die Fibrillen ordnen sich mit einer axialen Periodizität von ungefähr 64 nm an.
Obwohl es verschiedene Arten von Kollagen gibt, wird die hauptsächlich vorkommende Art als "Typ I" bezeichnet, das das Hauptkollagen der Haut, Knochen und Sehnen darstellt. Das Kollagen vom Typ I besitzt die folgende Ketten­ zusammensetzung [α1(I)₂α2]. Die α1(I) und α2 Ketten sind Homologe.
Bei jungen Tieren liegt nur eine geringe intermolekulare und interfibrilläre Vernetzung vor, was zu einer gewissen Löslichkeit des Kollagens führt. Bei fortschreitendem Alterungsprozeß nimmt jedoch die intermolekulare und interfibrilläre Vernetzung zu, wodurch das Kollagen unlöslich wird.
Die Verwendung von Kollagen in im wesentlichen reiner Form ist bekannt, z. B. zur Behandlung und Abdeckung von Brandwunden (US-PS 39 39 831 und 35 14 518) und für ähnliche medizinische Anwendungsgebiete (US-PS 31 57 524 und 36 28 974) ebenso wie seine Verwendung als Nahrungsmittel­ zusatz.
Während es bekannt ist, daß Kollagen durch Depolymerisierung von natürlichem unlöslichem Kollagen mit anschließender Rekonstitution gereinigt werden kann, sind die dabei erzielbaren Ausbeuten verhältnismäßig gering und das entstehende Produkt ist nicht mehr immer biologisch aktiv.
In der US-PS 36 37 642 ist beispielhaft ein Verfahren zum Lösen von unlöslichem Kollagen und Regenerieren der Faser angegeben.
Ferner haben Kollagen und ähnliche Substanzen auf dem Gebiet der Nahrungsmittel, Kosmetika und Pharmazeutika Anwendung gefunden.
Es sind noch andere Methoden zum Löslichmachen und Rekonstituieren von Kollagen bekannt unter Anwendung von Enzymen, die die intra- und interfibrillären Bindungen lösen, wie in der US-PS 30 34 852 angegeben. Außerdem sind Verfahren zur Umwandlung von faserigen Kollagenmassen zu einem Bahnmaterial bekannt (US-PS 29 34 447 und 29 34 446).
Nach den US-PS 39 39 831 und 37 42 955 können Materialien zum Abdecken von Wunden aus Kollagen hergestellt werden, in denen Antibiotika und ähnliches dispergiert ist, um die Heilung der verletzten bzw. verbrannten Haut zu unter­ stützen.
Es ist auch Aufgabe der Erfindung, ein Verfahren zu entwickeln, um Kollagenfasern bzw. -fibrillen zu lösen und zu regenerieren durch das im wesentlichen alle Verunreinigungen aus dem Kollagen entfernt werden und mit dessen Hilfe ein im wesentlichen reines Kollagenprodukt erhalten wird, das biologisch aktiv ist und im wesentlichen nicht antigen wirkt.
Der Ausdruck "Kollagenlösung" wird im Rahmen der Erfindung in dem üblichen Sinn verwendet, obwohl es sich aufgrund der Molekülgröße des biologisch aktiven Kollagens nicht um eine echte Lösung, sondern eher um eine Dispersion handelt.
Makromolekulare rekonstituierte Kollagenfasern bzw. -fibrillen werden erfindungsgemäß hergestellt durch mindestens 48 h langes Behandeln von natürlichem unlöslichem Kollagen mit einer wäßrigen Lösung, umfassend ein Alkalisulfat und ein Alkalihydroxid, um die in dem natürlichen unlöslichen Kollagen suspendierten Fette zu verseifen. Das fettfreie Kollagen wird dann mindestens 4 h mit einer wäßrigen Lösung behandelt, umfassend ein Alkalisulfat, um die Zwischenfaserbindungen zwischen den einzelnen Polypeptidketten zu sta­ bilisieren. Das Kollagen wird dann in einer wäßrigen sauren Lösung gelöst und mit einer Geschwindigkeit von -18 bis -24°C/h und vorzugsweise -20°C/h auf eine Temperatur von -60°C bis -70°C gefroren. Das gefrorene Kollagen wird bei einem Druck von 1,3 · 10-6 bis 1,3 · 10-8 bar mindestens 16 h im Vakuum getrocknet, um ein biologisch aktives Kollagen zu erhalten. Vor dem Einfrieren können verschiedene biologisch aktive Stoffe zu der wäßrigen Lösung zugegeben werden. Das Kollagenprodukt kann dann einem Tier inplantiert oder auf ähnliche Weise appliziert werden, wobei das Arzneimittel langsam freigesetzt wird. Das Produkt kann in dem biologischen System verbleiben und löst sich langsam aufgrund des enzymatischen Abbaus und durch andere biologische Prozesse auf.
Erfindungsgemäß geeignete Alkalisulfate sind z. B. Natriumsulfat, Kaliumsulfat sowie Erdalkalisulfate wie Calciumsulfat, Magnesiumsulfat und ähnliche. Das bevorzugte Alkalisulfat ist Natriumsulfat. Die Alkalihydroxide, die erfindungsgemäß angewandt werden können, sind u. a. Natrium- und Kaliumhydroxid und insbesondere Natriumhydroxid. Erdalkalihydroxide wie Calciumhydroxid und Magnesiumhydroxid können teilweise anstelle der Alkalihydroxide angewandt werden. Es muß jedoch ausreichend Kalium- und/oder Natriumhydroxid vorhanden sein.
Die wäßrige Lösung des Alkalisulfats und Alkalihydroxids ist 1 bis 2,5 m, bezogen auf Alkalihydroxid und 0,5 bis 1 m, bezogen auf Alkalisulfat und 0,1 bis 0,5 m, bezogen auf andere Salzbestandteile. Insbesondere ist sie 2,0 bis 2,5 m, bezogen auf Alkalihydroxid, 0,9 bis 1,0 m auf Alkalisulfat und 0,1 bis 0,2 m auf andere Bestandteile. Das Alkalihydroxid und Alkalisulfat sollten zu Beginn einen pH-Wert von ungefähr 12 bis 13 besitzen.
Die anderen Salzbestandteile sind u. a. Alkalichlorid wie Natrium- und Kaliumchlorid, Erdalkalichloride wie Magnesium- und Calciumchlorid und ähnliches. Es sollte sorgfältig darauf geachtet werden, das Alkalisulfat in der entsprechenden Menge zu dem Alkalihydroxid zuzugeben, um eine vollständige Verseifung der in dem natürlichen unlöslichen Kollagen enthaltenen Fette zu erreichen während die ursprünglichen (nativen) Eigenschaften des Kollagens beibehalten werden und um das Quellen der Kollagenfasern bzw. Fibrillen zu steuern. Wenn zuviel Natriumhydroxid angewandt wird, wird das Kollagen denaturiert und die intermolekularen Bindungen gelöst. Wenn nicht genügend Natriumhydroxid angewandt wird, bleiben in dem Kollagenprodukt Verunreinigungen wie Fette u. a. hydrolisierbare Substanzen enthalten, die unerwünscht sind.
Bei Behandlung des natürlichen unlöslichen Kollagens mit der wäßrigen Lösung des Alkali- (bzw. Erdalkali)-sulfats und Alkalihydroxids sollte das natürliche unlösliche Kollagen in Stücke geschnitten werden, die ausreichend klein sind, so daß die wäßrige Lösung darin eindringen und reagieren kann. Die natürlichen Kollagenstücke sollten ungefähr 10 cm³ oder kleiner und insbesondere 5 cm³ oder kleiner sein. Außerdem sollte die Behandlung mindestens 48 h bei Raumtemperatur stattfinden, um alle in dem natürlichen unlöslichen Kollagen enthaltenen Fette vollständig zu verseifen und eine gleichmäßige Quellung der Kollagenfasern zu erreichen. Es sollte darauf geachtet werden, daß die Anfangsbehandlung mit dem Alkalisulfat und dem Alkalihydroxid nicht zu lange stattfindet oder die Polypeptidketten werden angegriffen und das Kollagen wird denaturiert. Wenn z. B. natürliches unlösliches Kollagen in Stücke von 5 cm³ geschnitten wird, sollte die anfängliche Behandlung nicht mehr als 96 h betragen, da sonst die Kollagenfasern zu nieder-molekularen Bestandteilen abgebaut und denaturiert werden. Nach dieser Anfangsbehandlung wird das natürliche unlösliche Kollagen sehr weich und transparent.
Nach Entfernung der ersten Behandlungslösung wird das Kollagen mit einer Lösung eines Alkalisulfats oder Erdalkalisulfats oder einer Kombination davon bei einem im wesentlichen neutralen pH-Wert behandelt. Die Konzentration an Sulfat sollte ungefähr 0,5 bis 1,0 m sein. Andere Salze wie Natriumchlorid, Kaliumchlorid, Magnesiumchlorid und ähnliche können zu dieser Salzlösung zugesetzt werden so lange eine ausreichende Menge Alkalisulfat, vorzugsweise Natriumsulfat, angewandt wird, um die Zwischenfaserbindungen des Kollagens zu stabilisieren. Diese Behandlung mit dem Alkalisalz sollte mindestens 4 h durchgeführt wer­ den.
Vorzugsweise wird das Kollagen dann mit einer sauren wäßrigen Lösung mit einem pH-Wert zwischen 3 und 4 neutralisiert. Die zur Bildung der wäßrigen Lösung angewandten Säuren sind üblicherweise Borsäure, Weinsäure, Essigsäure oder ähnliches. Das Waschen wird ungefähr 6 h durchgeführt, um restliche Salze und basische Bestandteile zu entfernen. Der pH-Wert des Kollagens beträgt anschließend ungefähr 7.
Das Kollagen wird dann mit (Leitungs)wasser gewaschen. Um restliche Salze innerhalb des Kollagens zu entfernen, wird es mehrere Male mit destilliertem Wasser gewaschen. Vorzugsweise dauert jeder Waschzyklus ungefähr 4 h. Nach jedem 4 h Zyklus wird das Wasser abdekantiert und frisches destilliertes Wasser zugegeben. Normalerweise sind 4 bis 7 Waschzyklen erforderlich, um die restlichen Salze zu ent­ fernen.
Das Kollagen wird dann in einer wäßrigen sauren Lösung gelöst und vorzugsweise eine Lösung von 1 bis 1,5 Gew.-% Kollagen hergestellt. Die zum Lösen der Kollagenfasern geeigneten Säuren sind die schwachen organischen Säuren wie Essigsäure, Citronensäure, Milchsäure, Ascorbinsäure und Weinsäure. Vorzugsweise wird der pH-Wert auf einen Wert unter 4 eingestellt, um eine gute Löslichkeit zu erhalten. Im Falle von Ascorbinsäure reicht eine 1%ige Lösung aus und im Falle von Essig- oder Weinsäure eine 0,5%ige Lösung. Der pH-Wert der wäßrigen Lösung sollte ungefähr 3 bis 4 sein.
Die Kollagenlösung wird dann gefroren, wobei die Temperatur mit einer Geschwindigkeit von -18 bis -24°C pro h verringert wird bis auf einen Wert von -60 bis -70°C.
Das Einfrieren mit einer Geschwindigkeit von ungefähr -18 bis -24° pro h ist erforderlich, damit die entstehenden Eiskristalle außerordentlich klein werden und die Kollagenketten nicht nennenswert auflösen, was zu einer Verringerung des Molekulargewichts des entstehenden Kollagenproduktes führen würde.
Um die gewünschte Geschwindigkeit beim Einfrieren zu erreichen, wird die Kollagenlösung in eine Gefriervorrichtung von -60 bis -70°C gegeben.
Die gefrorene Lösung wird dann in eine Gefrier-Trocken-Vorrichtung mit einer Anfangstemperatur von -60 bis -70°C gegeben und die Flüssigkeit bei 1,3 · 10-6 bis 1,3 · 10-8 bar sublimiert. Das Gefrier-Trocknen erfordert ungefähr 12 bis 24 h bei einer Endtemperatur von 30°C.
Obwohl eine extreme Zerstörung der Kollagenketten durch das Gefrieren vermieden werden soll, ist ein gewisser Abbau durch die tiefe Temperatur notwendig, um reaktionsfähige und sich verbindende Stellen zu schaffen, die zu einer Vernetzung führen und damit zu einer erhöhten mechanischen und enzymatischen Stabilität des Endproduktes und für die Kombination mit anderen Zusätzen, die in dem Kollagen enthalten sein sollen.
Das erfindungsgemäß hergestellte Kollagen besitzt ein mittleres Molekulargewicht von ungefähr 450 000 und eine axiale Periodizität zwischen den Fibrillen der Tripelhelix von ungefähr 75 bis 85 nm und insbesondere ungefähr 80 nm im Gegensatz zu Tropokollagen mit ungefähr 64 nm. Überraschender Weise hat es sich gezeigt, daß das erfindungsgemäß hergestellte bzw. gereinigte Kollagen im wesentlichen die gleiche biologische Aktivität besitzt wie natürliches Kollagen, das mit Hilfe langwieriger und mühsamer Verfahren gereinigt worden ist.
Das erfindungsgemäß hergestellte Produkt ist eine schwammige zähe Masse.
Das mittlere Molekulargewicht von erfindungsgemäß hergestelltem Kollagen beträgt 383 000 bis 460 000 verglichen mit 300 000 für Tropokollagen. Das erfindungsgemäß hergestellte Kollagen enthält einen Anteil von 4 bis 6% Polypeptidketten mit einem Molekulargewicht von 30 000 bis 60 000 und 8 bis 12% mit einem Molekulargewicht von 1 000 000 bis 1 500 000.
Wie oben gesagt, können biologisch wirksame Substanzen zu der Kollagenlösung oder Dispersion vor dem Einfrieren zugegeben werden. Diese Substanzen können Arzneimittel oder ähnliches sein. Da das erfindungsgemäß hergestellte Kollagenprodukt dem natürlichen oder rekonstituierten Kollagen sehr nahe kommt, kommt die Abgabe der biologisch wirksamen Substanz aus dem Kollagen der Absorption des Materials durch ein biologisches System nahe, in das Kollagen implantiert oder indem es enthalten ist.
Es wird angenommen, daß die Trennung der Polypeptidketten während des Gefrierens zur Bildung von Resten führt, die sich mit bestimmten Arzneimitteln verbinden und so in vivo freigesetzt werden können. Wenn Kollagen, in dem ein Arzneimittel enthalten ist, implantiert wird und das Arzneimittel verbraucht wird, löst sich das Kollagen langsam und/oder wird enzymatisch abgebaut oder durch einen anderen biologischen Prozeß. Das Implantat muß daher nicht entfernt werden.
Eine spezielle Anwendungsart der erfindungsgemäß hergestellten Kollagenprodukte liegt in der Blockierung des Sexualzyklus bei Tieren. Ein geeignetes Hormon wie Chlormadinonacetat, Hydroxyprogesteron-caproat, Medroxy­ progesteron, Norethindron, Norethynodrel, Progesteron, 3-Äthylendioxy-17-acetoxy-6-methyl-pregn-5-en-20-on und ähnliches wird vor dem Einfrieren zu der Kollagenlösung oder Dispersion gegeben. Das Hormon wird in einer wirksamen Menge zugegeben, um den Sexualzyklus zu blockieren, vorzugsweise in einer Menge von 1 Teil auf 40 000 Teile Kollagenlösung bis zu 1 Teil auf 50 000 Teile Kollagen­ lösung.
Der aus dem Kollagen hergestellte Formkörper wird in den Uterus des Tieres eingesetzt. Nach 14 bis 18 Tagen ist das Hormon aus dem Kollagenformkörper abgegeben. 2 bis 7 Tage nach Beendigung der Hormongabe tritt verstärkt Brunst auf und das Tier kann dann gedeckt werden. Es kann zu diesem Zeitpunkt auch künstlich besamt werden.
Das erfindungsgemäß hergestellte Kollagen kann auch Antibiotika wie Penicillin, Tetracyclin, Oxytetracyclin, Chlortetracyclin, Chloramphenicol, Sulfonamid und ähnliches zusammen mit dem Hormon enthalten, um während der Besamung und anschließenden Trächtigkeit eine Infektion zu vermeiden.
2 bis 14 Tage nach dem Einsetzen des Kollagenformkörpers beginnt der enzymatische Abbau des Kollagens. Ferner kann zu dem Kollagen Glutaraldehyd zugesetzt werden, um die für den biologischen Abbau erforderliche Zeit zu erhöhen.
Bei einer anderen Anwendungsform der erfindungsgemäß hergestellten Formkörper wird ein Spermizid (wie Nonyl­ phenoxypolyoxyäthylenäthanol) auf die gleiche Weise, wie es für das Hormon angegeben ist, zu der Kollagenlösung zugesetzt. Der Kollagenformkörper kann dann in die Scheide eingeführt werden und das Spermizid tötet die in die Scheide gelangenden Spermien ab und verhindert damit eine Empfängnis. Die in der Scheide vorhandenen Enzyme lösen das Kollagen langsam auf, so daß eine Entfernung des Formkörpers nicht erforderlich ist. Wie oben angegeben können außerdem Glutaraldehyd u. a. Vernetzungsmittel zugesetzt werden, um die Abbaugeschwindigkeit des Kollagens in vivo zu verringern.
Es ist ferner möglich, der Kollagenlösung vor dem Einfrieren Antibiotika Bacteriostatica oder Bacterizide zuzusetzen. Nach dem Gefrier-Trocknen kann die Kollagenmasse zur Behandlung von Verbrennungen oder ähnlichem angewandt werden.
Allgemein gesagt können verschiedene Arzneimittel der Kollagenlösung zugesetzt werden und ein aus dem Kollagen hergestellter Formkörper kann implantiert bzw. eingeführt werden, um eine biologische, physiologische oder psychologische Wirkung in biologischen Systemen auszuüben.
Die Erfindung wird anhand der folgenden Beispiele näher erläutert.
Beispiel 1
1 kg Corium von rohen Kuhhäuten wurde in Stücke von 5 cm³ geschnitten. Diese Stücke wurden in einem Bottich mit einer Lösung der folgenden Zusammensetzung behandelt.
Bestandteile
Menge
Wasser|3000 ml
Calciumhydroxid 150 g
Kaliumhydroxid 50 g
Natriumhydroxid 100 g
Natriumsulfat 144 g
Natriumchlorid 100 g
Kaliumchlorid 200 g
Calciumsulfat 100 g
Das natürliche unlösliche Kollagen wurde in der oben angegebenen Lösung 48 h unter Rühren behandelt. Die Beobachtung und Unterbrechung nach dieser Behandlung zeigte eine Verseifung aller Fette und einen gleichmäßigen Quellungsgrad des Kollagens. Das Corium war sehr weich, transparent und porös geworden.
Die Behandlungsflüssigkeit wurde abgelassen und eine zweite Lösung der folgenden Zusammensetzung in den Behälter gegeben.
Bestandteile
Menge
Wasser|6000 ml
Natriumsulfat 144 g
Natriumchlorid 100 g
Kaliumchlorid 100 g
Calciumsulfat 100 g
Das Corium wurde mindestens 4 h zur Stabilisierung der Zwischenfaserbindungen mit der Natriumsulfatlösung be­ handelt.
Die zweite Lösung wurde abgezogen und eine Lösung von 3000 ml Wasser und 90 g Borsäure zum Waschen und Ansäuern des zweimal behandelten Coriums zugegeben. Diese Behandlung nahm 6 h in Anspruch bis das Kollagen einen neutralen pH-Wert hatte. Das Kollagen wurde dann von der Flüssigkeit abgetrennt und mit 10 l Leitungswasser 4 h behandelt. Das Leitungswasser wurde abgezogen und das Kollagen erneut mit 15 l destilliertem Wasser mindestens 4 h behandelt, um restliche Salze auszuwaschen und das Wasser wurde abdekantiert und 15 l destilliertes Wasser zugegeben. Dieses Verfahren wurde sechs Mal durchgeführt. Das Kollagen wurde in 10 l 1%iger Ascorbinsäure gelöst und bis zur Homogenität gerührt. Die Kollagenlösung wurde in 1 cm hohe Formen mit einem Durchmesser von 2,5 cm gegossen. Die Formen wurden bei einer Temperatur von -60 bis -70°C gefroren, um eine Temperaturverringerung des Kollagens von 20°C pro h bis auf eine Temperatur von -60°C zu erreichen. Das Kollagen wurde dann mit einer Anfangstemperatur von -60°C und einer Endtemperatur von 30°C nach 16 h gefriergetrocknet.
Das entsprechend Beispiel 1 hergestellte Kollagen besaß ein mittleres Molekulargewicht von 450 000. Die axiale Periode zwischen den Kollagenfibrillen betrug ungefähr 80 nm.
Das nach diesem Beispiel hergestellte Kollagen konnte leicht durch Kollagenase abgebaut werden und zeigte bei der Untersuchung keine antigene Wirkung.
Das entsprechend Beispiel 1 hergestellte Kollagen besaß gute mechanische Eigenschaften einschließlich Elastizität, Kompressibilität und Weichheit.
Beispiel 2
Das Beispiel 1 wurde wiederholt mit der Ausnahme, daß 0,025 g Medroxyprogesteron-acetat zu 1000 ml der Kollagenlösung vor dem Eingießen in die Formen zugegeben wurden.
Die Kollagen-Tabletten (Pellets), in denen das Hormon gleichmäßig dispergiert war, wurden in den Uterus von Kühen eingesetzt, um Brunst zu erzeugen. Aufgrund der (Komplex)-Bindung des Kollagens mit dem Hormon wurde das Hormon innerhalb eines Zeitraums von 2-14 Tagen abgegeben. Nach dieser Zeit wurden die Kühe künstlich besamt. Die Kollagen-Tablette blieb in dem Uterus und löste sich langsam durch enzymatischen Abbau auf.
Beispiel 3
Das Beispiel 2 wurde wiederholt mit der Ausnahme, daß vor dem Einfrieren 0,25 g Chlormycetin zu der Kollagenlösung zugesetzt wurden.
Das Chlormycetin wirkte zur Verhütung einer Infektion der Kuh während der Besamung und anschließenden Trächtig­ keit.

Claims (14)

1. Makromolekulare rekonstituierte Fasern bzw. Fibrillen aus regeneriertem Kollagen mit einem mittleren Molekulargewicht von 383 000 bis 460 000, das 4 bis 6% Polypeptidketten mit einem Molekulargewicht von 30 000 bis 60 000 und 8 bis 12% Polypeptidketten mit einem Molekulargewicht von 1000 bis 1 500 000 enthält und nicht antigen wirkt.
2. Fasern nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß sie vernetzt sind.
3. Fasern nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, daß sie eine kleine Menge einer biologisch wirksamen Substanz enthalten.
4. Fasern nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß die biologisch wirksame Substanz ein Hormon, ein Spermizid oder eine Antibiotikum ist.
5. Verfahren zur Herstellung von Kollagenfasern nach Ansprüchen 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, daß man ausgehend von Rinder-Corium
  • a) natürliches, unlösliches Kollagen mindestens 48 h mit einer wäßrigen Lösung, enthaltend Alkalisulfat und Alkalihydroxid, behandelt,
  • b) das fettfreie Kollagen mindestens 4 h mit einer wäßrigen Lösung, enthaltend Alkalisulfat, behandelt und gegebenenfalls mit destilliertem Wasser wäscht,
  • c) das Kollagen in einer sauren wäßrigen Lösung löst,
  • d) der Lösung gegebenenfalls eine kleine Menge einer biologisch wirksamen Substanz zusetzt,
  • e) diese Lösung mit einer Geschwindigkeit von -18 bis -24°C/h einfriert und
  • f) die Fasern mindestens 12 h unter einem Vakuum von 1,3 · 10-6 bis 1,3 · 10-8 bar trocknet.
6. Verfahren nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, daß man als Alkalisulfat Natriumsulfat verwendet.
7. Verfahren nach Ansprüchen 5 oder 6, dadurch gekennzeichnet, daß man das Alkalisulfat in einer Menge verwendet, daß die Lösung 0,5 bis 1 m wird.
8. Verfahren nach Ansprüchen 5 bis 7, dadurch gekennzeichnet, daß man als Alkalihydroxid Natriumhydroxid verwendet.
9. Verfahren nach Ansprüchen 5 bis 8, dadurch gekennzeichnet, daß man das Alkalihydroxid in einer Menge verwendet, daß die Lösung 1 bis 2,5 m wird.
10. Verfahren nach Ansprüchen 5 bis 9, dadurch gekennzeichnet, daß man die Waschstufe mindestens 4 h mit destilliertem Wasser behandelt, das Wasser abdekantiert und die Behandlung insgesamt viermal wieder­ holt.
11. Verfahren nach Ansprüchen 5 bis 10, dadurch gekennzeichnet, daß man das Kollagen neutrali­ siert.
12. Verfahren nach Ansprüchen 5 bis 11, dadurch gekennzeichnet, daß man als Säure in der wäßrigen Lösung Ascorbinsäure verwendet.
13. Verfahren nach Anspruch 12, dadurch gekennzeichnet, daß die wäßrige Lösung einen pH-Wert von 3 bis 4 besitzt.
14. Verfahren nach Ansprüchen 5 bis 13, dadurch gekennzeichnet, daß man als biologisch wirksame Substanz ein Hormon, ein Antibiotikum oder ein Spermizid verwendet.
DE19803034273 1979-09-12 1980-09-11 Regeneriertes kollagen und verfahren zu dessen herstellung Granted DE3034273A1 (de)

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US06/074,738 US4279812A (en) 1979-09-12 1979-09-12 Process for preparing macromolecular biologically active collagen

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DE3034273A1 DE3034273A1 (de) 1981-04-02
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GB (2) GB2058084B (de)
IT (1) IT1128187B (de)

Families Citing this family (77)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4374121A (en) * 1979-09-12 1983-02-15 Seton Company Macromolecular biologically active collagen articles
US4412947A (en) * 1979-09-12 1983-11-01 Seton Company Collagen sponge
US4522753A (en) * 1980-07-17 1985-06-11 Massachusetts Institute Of Technology Method for preserving porosity in porous materials
US4440680A (en) * 1980-09-24 1984-04-03 Seton Company Macromolecular biologically active collagen articles
DE3124981A1 (de) * 1981-06-25 1983-01-13 Dr. Ruhland Nachfolger GmbH, 8425 Neustadt Wirkstoffhaltige kollageneinlage zum einfuehren in knochen oder weichteile und verfahren zu deren herstellung
US4432888A (en) * 1981-09-30 1984-02-21 Seton Company Surface active agents based on polypeptides
US4590022A (en) * 1981-10-26 1986-05-20 Seton Company Method of forming a moisture permeable polymeric sheet material
US4415628A (en) * 1981-10-26 1983-11-15 Seton Company Moisture vapor permeable sheet materials
US4424208A (en) 1982-01-11 1984-01-03 Collagen Corporation Collagen implant material and method for augmenting soft tissue
US4505855A (en) * 1982-09-30 1985-03-19 Massachusetts General Hospital Transparent non-fibrilized collagen material by ultracentrifugation
JPS59164723A (ja) * 1983-03-10 1984-09-17 Koken:Kk 再生コラーゲンフイブリルを含有する基質及びその製造方法
US4494994A (en) * 1983-03-28 1985-01-22 Seton Company Surface active agent compositions containing polypeptides and lignin sulfonic acid
US4861714A (en) * 1985-04-04 1989-08-29 Verax Corporation Weighted collagen microsponge for immobilizing bioactive material
DE3522626A1 (de) * 1985-06-25 1987-01-08 Merz & Co Gmbh & Co Loeslicher kollagen-schwamm
ES2054613T3 (es) * 1985-12-27 1994-08-16 Sumitomo Pharma Un metodo para preparar una formulacion de liberacion mantenida.
IL78826A (en) * 1986-05-19 1991-05-12 Yissum Res Dev Co Precursor composition for the preparation of a biodegradable implant for the sustained release of an active material and such implants prepared therefrom
CA1257199A (en) * 1986-05-20 1989-07-11 Paul Y. Wang Preparation containing bioactive macromolecular substance for multi-months release in vivo
US5024841A (en) * 1988-06-30 1991-06-18 Collagen Corporation Collagen wound healing matrices and process for their production
US5110604A (en) * 1988-06-30 1992-05-05 Collagen Corporation Processes for producing collagen matrixes and methods of using same
US4950483A (en) * 1988-06-30 1990-08-21 Collagen Corporation Collagen wound healing matrices and process for their production
US4948540A (en) * 1988-08-01 1990-08-14 Semex Medical, Inc. Method of preparing collagen dressing sheet material
DE3835237C1 (de) * 1988-10-15 1989-12-28 B. Braun Melsungen Ag, 3508 Melsungen, De
US4992220A (en) * 1989-06-23 1991-02-12 Neri Michael A Method for producing biodegradable packaging material
AT393956B (de) * 1989-10-20 1992-01-10 Loidl Rudolf Vorrichtung zum aufbewahren und zeitpunktgerechten einnehmen von medikamenten
US5425769A (en) * 1990-04-23 1995-06-20 Snyders, Jr.; Robert V. Composition of material for osseous repair
IT1255298B (it) * 1992-01-27 1995-10-26 Xenocollagene e derivati
GB9206508D0 (en) * 1992-03-25 1992-05-06 Jevco Ltd Biopolymer composites
US5660857A (en) * 1993-03-22 1997-08-26 Johnson & Johnson Medical Inc. Biopolymer composites
DE4414755C2 (de) * 1994-04-27 2000-11-16 Lohmann Therapie Syst Lts Kollagenzubereitung zur gesteuerten Abgabe von Wirkstoffen, Verfahren und Verwendung
PT1704878E (pt) * 1995-12-18 2013-07-17 Angiodevice Internat Gmbh Composições de polímeros reticulados e métodos para a sua utilização
US7883693B2 (en) 1995-12-18 2011-02-08 Angiodevice International Gmbh Compositions and systems for forming crosslinked biomaterials and methods of preparation of use
US6458889B1 (en) 1995-12-18 2002-10-01 Cohesion Technologies, Inc. Compositions and systems for forming crosslinked biomaterials and associated methods of preparation and use
US6833408B2 (en) * 1995-12-18 2004-12-21 Cohesion Technologies, Inc. Methods for tissue repair using adhesive materials
US6231888B1 (en) 1996-01-18 2001-05-15 Perio Products Ltd. Local delivery of non steroidal anti inflammatory drugs (NSAIDS) to the colon as a treatment for colonic polyps
CA2251475C (en) * 1996-04-04 2006-09-05 Immuno Aktiengesellschaft Hemostatic sponge based on collagen
US7241309B2 (en) * 1999-04-15 2007-07-10 Scimed Life Systems, Inc. Self-aggregating protein compositions and use as sealants
US6177609B1 (en) 1997-03-10 2001-01-23 Meadox Medicals, Inc. Self-aggregating protein compositions and use as sealants
US6531152B1 (en) 1998-09-30 2003-03-11 Dexcel Pharma Technologies Ltd. Immediate release gastrointestinal drug delivery system
US6632451B2 (en) 1999-06-04 2003-10-14 Dexcel Pharma Technologies Ltd. Delayed total release two pulse gastrointestinal drug delivery system
EP1583561A3 (de) * 2002-12-30 2005-12-07 Angiotech International Ag Auf gewebe reagierende verbindungen, diese enthaltende zubereitungen, und ihre verwendungen
ATE457716T1 (de) 2002-12-30 2010-03-15 Angiotech Int Ag Wirkstofffreisetzung von schnell gelierender polymerzusammensetzung
FR2861734B1 (fr) 2003-04-10 2006-04-14 Corneal Ind Reticulation de polysaccharides de faible et forte masse moleculaire; preparation d'hydrogels monophasiques injectables; polysaccharides et hydrogels obtenus
DE602004021022D1 (de) * 2003-10-28 2009-06-18 Medtronic Inc Verfahren zur herstellung von vernetzten materialien und bioprothetischen vorrichtungen
KR101148445B1 (ko) 2004-04-28 2012-07-05 안지오디바이스 인터내셔널 게엠베하 가교된 생합성물질을 형성하기 위한 조성물 및 시스템, 및 이와 관련된 제조 및 사용 방법
WO2006028415A1 (en) * 2004-09-09 2006-03-16 Agency For Science, Technology And Research Process for isolating biomaterial from tissue and an isolated biomaterial extract prepared therefrom
CA2581093C (en) 2004-09-17 2014-11-18 Angiotech Biomaterials Corporation Multifunctional compounds for forming crosslinked biomaterials and methods of preparation and use
US20070224251A1 (en) * 2006-03-22 2007-09-27 Masao Tanihara Hemostatic material
US20080293637A1 (en) * 2007-05-23 2008-11-27 Allergan, Inc. Cross-linked collagen and uses thereof
US8697044B2 (en) 2007-10-09 2014-04-15 Allergan, Inc. Crossed-linked hyaluronic acid and collagen and uses thereof
JP5670196B2 (ja) 2007-11-16 2015-02-18 バイセプト セラピューティクス、インク. 紫斑を治療する組成物および方法
US20090143348A1 (en) * 2007-11-30 2009-06-04 Ahmet Tezel Polysaccharide gel compositions and methods for sustained delivery of drugs
US8394784B2 (en) * 2007-11-30 2013-03-12 Allergan, Inc. Polysaccharide gel formulation having multi-stage bioactive agent delivery
US8394782B2 (en) * 2007-11-30 2013-03-12 Allergan, Inc. Polysaccharide gel formulation having increased longevity
US8357795B2 (en) 2008-08-04 2013-01-22 Allergan, Inc. Hyaluronic acid-based gels including lidocaine
ES2829971T3 (es) 2008-09-02 2021-06-02 Tautona Group Lp Hilos de ácido hialurónico y/o derivados de los mismos, métodos para fabricar los mismos y usos de los mismos
EP2413894B1 (de) * 2009-04-02 2017-01-04 Allergan, Inc. Haarartige geformte hydrogele zur verstärkung von weichteilen
US20110171311A1 (en) * 2010-01-13 2011-07-14 Allergan Industrie, Sas Stable hydrogel compositions including additives
US9114188B2 (en) 2010-01-13 2015-08-25 Allergan, Industrie, S.A.S. Stable hydrogel compositions including additives
US20110172180A1 (en) 2010-01-13 2011-07-14 Allergan Industrie. Sas Heat stable hyaluronic acid compositions for dermatological use
US20110171286A1 (en) * 2010-01-13 2011-07-14 Allergan, Inc. Hyaluronic acid compositions for dermatological use
KR101764451B1 (ko) 2010-03-12 2017-08-02 알러간 인더스트리 에스에이에스 피부 상태 개선을 위한 히알루론안 폴리머 및 만니톨을 포함하는 유체 조성물
PL3078388T3 (pl) 2010-03-22 2019-08-30 Allergan, Inc. Usieciowane hydrożele do powiększania tkanek miękkich
US8697057B2 (en) 2010-08-19 2014-04-15 Allergan, Inc. Compositions and soft tissue replacement methods
US9005605B2 (en) 2010-08-19 2015-04-14 Allergan, Inc. Compositions and soft tissue replacement methods
US8883139B2 (en) 2010-08-19 2014-11-11 Allergan Inc. Compositions and soft tissue replacement methods
US8889123B2 (en) 2010-08-19 2014-11-18 Allergan, Inc. Compositions and soft tissue replacement methods
US8435541B2 (en) 2010-09-02 2013-05-07 Bath & Body Works Brand Management, Inc. Topical compositions for inhibiting matrix metalloproteases and providing antioxidative activities
US9393263B2 (en) 2011-06-03 2016-07-19 Allergan, Inc. Dermal filler compositions including antioxidants
US20130096081A1 (en) 2011-06-03 2013-04-18 Allergan, Inc. Dermal filler compositions
US9408797B2 (en) 2011-06-03 2016-08-09 Allergan, Inc. Dermal filler compositions for fine line treatment
KR102312056B1 (ko) 2011-06-03 2021-10-12 알러간 인더스트리 에스에이에스 항산화제를 포함하는 피부 충전제 조성물
US9662422B2 (en) 2011-09-06 2017-05-30 Allergan, Inc. Crosslinked hyaluronic acid-collagen gels for improving tissue graft viability and soft tissue augmentation
US20130244943A1 (en) 2011-09-06 2013-09-19 Allergan, Inc. Hyaluronic acid-collagen matrices for dermal filling and volumizing applications
RS61726B1 (sr) * 2012-01-09 2021-05-31 Innocoll Pharm Ltd Modifikovani kolagen
CN103505759B (zh) * 2013-07-04 2015-04-29 四川大学 一种用环氧季铵盐对胶原进行改性的方法
ES2761558T3 (es) 2014-09-30 2020-05-20 Allergan Ind Sas Composiciones de hidrogel estables que incluyen aditivos
WO2016128783A1 (en) 2015-02-09 2016-08-18 Allergan Industrie Sas Compositions and methods for improving skin appearance

Family Cites Families (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2934447A (en) * 1957-10-22 1960-04-26 United Shoe Machinery Corp Collagen fiber masses and methods of making the same
US3034852A (en) * 1960-01-26 1962-05-15 Japan Leather Mfg Co Ltd Solubilization of insoluble collagen fibers and reconstitution thereof
US3157524A (en) * 1960-10-25 1964-11-17 Ethicon Inc Preparation of collagen sponge
GB1195061A (en) * 1966-05-27 1970-06-17 Fmc Corp Coated Structures and Methods of Forming Them.
JPS4615033B1 (de) * 1967-09-16 1971-04-22
US3514518A (en) * 1967-12-19 1970-05-26 Pierre Charier Vadrot Process for preparation of gelatinous material from animal collagen
US3742955A (en) * 1970-09-29 1973-07-03 Fmc Corp Fibrous collagen derived product having hemostatic and wound binding properties
GB1347582A (en) * 1972-02-02 1974-02-27 Interprinderea Flacara Rosie Collagenic medicinal dressing
DE2462222A1 (de) * 1974-02-02 1976-05-06 Trommsdorff Fa H Loesliches, natives human-kollagen, dessen nicht-helikale peptide teilweise oder vollstaendig abgetrennt sind
US3939831A (en) * 1974-03-04 1976-02-24 Intreprinderea Flacara Rosie Process for preparing medicinal dressings
JPS597684B2 (ja) * 1976-05-20 1984-02-20 明治製菓株式会社 コラ−ゲンを用いた眼用徐放性制御医薬剤
US4066083A (en) * 1976-06-03 1978-01-03 Pentapharm A.G. Sterile surgical collagen product
US4097234A (en) * 1976-12-10 1978-06-27 Nippi, Incorporated Method for preparing dispersion of collagen fiber

Also Published As

Publication number Publication date
US4279812A (en) 1981-07-21
JPS5695195A (en) 1981-08-01
GB8302017D0 (en) 1983-02-23
GB2116978A (en) 1983-10-05
FR2464962B1 (de) 1983-07-22
CA1147726A (en) 1983-06-07
IT1128187B (it) 1986-05-28
GB2058084A (en) 1981-04-08
CH647947A5 (fr) 1985-02-28
DE3034273A1 (de) 1981-04-02
GB2116978B (en) 1984-02-22
JPS642120B2 (de) 1989-01-13
ES8106909A1 (es) 1981-09-01
GB2058084B (en) 1983-07-27
FR2464962A1 (fr) 1981-03-20
ES494963A0 (es) 1981-09-01
IT8049654A0 (it) 1980-09-11

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