CN102333440A - 脂加氧酶活性降低的大麦 - Google Patents

Abstract

本发明提供了功能性脂加氧酶(LOX)-1和LOX-2完全丧失的大麦和由其生产的植物产品，例如利用脂肪酸双加氧酶LOX-1和LOX-2的合成具有缺陷的大麦粒制备的麦芽。所述酶的主要活性分别涉及将亚油酸转化为9-氢过氧化十八碳二烯酸和13-氢过氧化十八碳二烯酸的双加氧作用。9-氢过氧化十八碳二烯酸代表了LOX通路代谢物，其可通过进一步酶促或自发反应导致反式-2-壬烯醛(T2N)的出现。本发明能够使酿酒者生产出即使在长期饮料储藏后，T2N特异性的陈腐异味水平仍不显著的啤酒。

Description

脂加氧酶活性降低的大麦

本申请中引用的所有专利和非专利文献都通过引用整体并入本文。

技术领域

本发明涉及植物生物技术领域的进展，其公开了两个脂加氧酶(LOX)LOX-1和LOX-2的合成具有缺陷的大麦植物及其产品，由此提供了用于多种用途的新原料。当例如用于饮料生产中时，所述原料有利于开发用于生产更具特色且风味更稳定的啤酒的新生产能力，所述啤酒中累积的异味化合物反式-2-壬烯醛(T2N)水平显著降低，并且还具有仅包含低水平T2N潜能(T2Npotential)的额外优点。

背景技术

大部分啤酒是以生长于世界许多地方的单子叶作物大麦(Hordeumvulgare，L.)为基础生产的。大麦的种植不仅是因为其作为工业产品(例如啤酒)的来源的经济重要性，而且还因为它是动物饲料的来源。

遗憾的是，还没有用于制备完全缺乏给定基因和相应蛋白的表达的转基因大麦植物的方法。通常，对于大麦，反义技术的运用可用于产生仍然表达一些所述蛋白的转基因植物(参见，例如Robbins等人，1998；Stahl等人，2004；Hansen等人，2007)。此外，还没有开发出在大麦植物中利用嵌合RNA/DNA或定点突变产生方法制备特定突变体的有效方法。事实上，没有报道在大麦中由寡核苷酸成功引导基因靶向的单个实例。Iida和Terada(2005)指出已经在玉米、烟草和水稻中进行了由寡核苷酸引导的基因靶向，但却没有在大麦中进行，并且所有这些情况下都使用ALS基因作为靶标。部分研究结论是，经适当改进的策略是否可用于可直接选择性基因(例如ALS基因)以外的其它基因中还有待观察。利用锌指核酶的靶向诱变代表了可在将来用于研究基础植物生物学或修饰农作物的另一个工具(Durai等人，2005；Tzfira and White，2005；Kumar等人，2006)。在这种情况下，诱变也没有继续进行或者成功地应用于大麦。

然而，可以通过利用化学处理或辐射，例如利用叠氮化钠(NaN₃，图1)处理的随机诱变法制备大麦突变体。一个实例是为了鉴定低肌醇六磷酸(phytate)突变体而用NaN₃诱变大麦粒并选择高水平游离磷酸(Rasmussen andHatzack，1998)；从2,000个筛选的麦粒中总共鉴定出10个突变体。然而，在NaN₃处理后鉴定特定突变体需要有效的筛选方法，且并非总能成功。

1970年，分离出了造成啤酒中纸板样风味的分子，经鉴定为T2N，这是一种挥发性C₉烯烃醛(Jamieson and Gheluwe，1970)。由于人体内T2N的味觉阈值极低(之前测定为约0.7nM或0.1ppb(Meilgaard，1975))，因此即使醛水平极低的产品也会因为该产品的异常味道而被认为是老化产品。然而，在新鲜啤酒中T2N水平通常非常低(Lermusieau等人，1999)，因此推测在储藏过程中，可从T2N加合物释放游离T2N(Nyborg等人，1999)。随后观察到麦芽汁中的T2N潜能与产品储藏后的T2N形成相关(Kuroda等人，2005)，该观察结果支持了上述推测。

大麦粒包含三种LOX酶：LOX-1、LOX-2和LOX-3(van Mechelen等人，1999)。LOX-1催化由亚油酸形成T2N和三羟基十八碳烯酸(缩写为THA)两者的前体9-氢过氧化十八碳二烯酸(9-HPODE；参见图2中LOX通路的部分综述)。LOX-2主要催化由亚油酸转化为13-HPODE，其进一步被代谢成具有约0.4-ppm高味觉阈值的C₆醛(Meilgaard，见上文)。LOX-3作用可能与本申请无关，原因有两个：大麦粒中相应基因的表达水平非常低，和LOX-3的产物特异性仍不清楚。

作为对上述数据的支持，数个报道已经指出T2N经由以下生化途径而产生，其包括先通过LOX-1的催化将亚油酸转化为9-HPODE，然后通过9-过氧化氢物裂解酶作用裂解9-HPODE(参见，例如Kuroda等人，2003，2005；Noodermeer等人，2001)。

麦芽中的总LOX活性和麦芽汁的壬烯醛潜能之间似乎没有关联。然而，推测LOX-1活性和麦芽汁T2N潜能之间具有显著关联，原因主要是认为LOX-2在麦芽汁中形成T2N潜能方面的活性较差(Kuroda等人，2005)。

如上文所述，在图2中显示了集中于由亚油酸至T2N的生化反应的部分LOX通路。LOX-1酶的主要活性涉及亚油酸至9-HPODE的转化，而9-HPODE是导致T2N形成的生化通路的上游代谢物。相比之下，LOX-2的主要活性涉及亚油酸至13-HPODE的转化，而13-HPODE独立于上文提及的形成T2N的生化通路。注意，LOX-1和LOX-2酶可利用亚麻酸作为底物，但由于相应通路不导致T2N形成，而使该活性在本申请的范围之外。

认为麦芽中的主要LOX活性由LOX-1产生(参见，例如Kuroda等人，2003)。

已经开发出了特征在于LOX-1活性降低或者没有LOX-1活性的数种不同的大麦植物。例如，Douma，A.C.等人的PCT申请WO 02/053721中公开了低LOX-1活性的大麦粒和大麦植物。并且，在Breddam，K.等人的WO2005/087934中关注了LOX-1活性有缺陷的两种不同大麦突变体：剪接突变体和具有提前终止密码子(premature translational stop codon)的突变体。如图1所示，通过突变植物的繁殖和选择鉴定出了这些突变体。上述突变体是通过筛选NaN₃诱变的大麦而鉴定出的，而Hirota，N.等人在EP 1609866中描述了通过筛选收集的大麦当地品种鉴定出的没有LOX-1活性的大麦植物。

已知合成低水平LOX的数个突变植物样本。然而，没有描述数个脂加氧酶活性具有缺陷的大麦植物，例如没有描述LOX-1和LOX-2活性均有缺陷的大麦植物。能够对植物进行遗传操作的方法常特异于特定的植物种类，因此，尽管已知少数水稻植物、大豆植物或拟南芥植物包含低水平的LOX，但用于制备此类植物的方法不能用于产生低LOX活性或无LOX活性的大麦植物。此外，一个植物物种的LOX突变体与另一植物物种的LOX突变体相比可能具有不同的性质。

发明概述

麦芽汁是生产基于麦芽的饮料(例如啤酒)过程中关键的复杂液体(参见图3，其提供了对整个啤酒制备过程的概述)。由LOX-1活性具有缺陷的大麦植物制备的麦芽汁的实际特征在于包含显著水平的T2N潜能，虽然所述水平低于由野生型大麦制备的麦芽汁。由于麦芽汁中的所述潜能与储藏后啤酒中形成的T2N相关(Kuroda等人，2005)，因此需要可用于生产T2N潜能的水平显著降低的麦芽汁的大麦植物。

已经描述了通过热处理降低LOX活性的方法。然而，所述热处理通常在大麦发芽(malting)和/或麦芽汁的制备过程中进行，因此，LOX活性的产物可以在大麦中聚集直至进行热处理。大麦的分析表明，大麦中存在显著量的LOX活性产物，甚至在大麦发芽前也是如此(Wackerbauer and Meyna，2002)。

本发明提供了LOX-1和LOX-2活性具有缺陷的大麦植物，并公开了所述大麦植物具有数个意义深远且惊人的优势。如上文所述，Kuroda等人(见上文)描述了麦芽中的LOX活性与麦芽汁中的T2N潜能之间缺乏关联性，并将此归因于LOX-2活性的存在。Kuroda等人(2005)因此认为LOX-2在T2N潜能形成方面的作用无关紧要。

酿造领域的研究者已致力于了解控制游离T2N和T2N潜能形成的要素。因此，当本发明提供试验证据以公开利用LOX-1和LOX-2活性均有缺陷的大麦植物在用于生产显示出非常低水平的T2N潜能的麦芽汁中的有益作用时，这非常令人意外，甚至令人困惑。同时还发现，由LOX-1和LOX-2活性均有缺陷的大麦植物制备的麦芽汁中的游离T2N水平低于由LOX-1无效大麦制备的麦芽汁。

本发明的一个目的是提供由大麦植物或其部分制备的饮料，其中所述饮料包含非常低水平的T2N潜能，并且其中所述大麦植物或其部分包含导致LOX-1活性的功能完全丧失(例如功能性LOX-1酶完全丧失)的第一突变，和导致LOX-2活性的功能完全丧失(例如活性LOX-2酶完全丧失)的第二突变。

本发明还旨在提供用于制备本发明的饮料的大麦植物。因此，本发明描述了大麦植物或其部分的产生，其中，所述大麦植物或其部分包含导致LOX-1活性的功能完全丧失(例如功能性LOX-1酶完全丧失)的第一突变，和导致LOX-2活性的功能完全丧失(例如功能性LOX-2酶完全丧失)的第二突变。

此外，本发明还提供了包含经加工的大麦植物或其部分的植物产品，其中所述植物包含导致LOX-1活性功能完全丧失(例如功能性LOX-1酶完全丧失)的第一突变和导致LOX-2活性功能完全丧失(例如功能性LOX-2酶完全丧失)的第二突变。不受限制地，上述植物产品可以为，例如麦芽组合物，或麦芽汁组合物，或饮料(例如基于麦芽的饮料，如啤酒或基于无醇麦芽的饮料)，或者基于大麦的饮料，或者基于麦芽和大麦和任选地其它成分的混合物的饮料。所述植物产品还可以为大麦糖浆、麦芽糖浆、大麦提取物和麦芽提取物。

此外，本发明还涉及用于生产特征在于T2N潜能水平非常低的饮料的方法，所述方法包括以下步骤：

(i)制备包含大麦植物或其部分的组合物，其中所述大麦植物或其部分包含导致LOX-1活性功能完全丧失(例如功能性LOX-1酶完全丧失)的第一突变和导致LOX-2活性功能完全丧失(例如功能性LOX-2酶完全丧失)的第二突变；

(ii)将(i)的组合物加工成饮料；

由此获得特征在于T2N潜能水平非常低的饮料。

本发明还涉及大麦植物，其除了包含导致LOX-1活性功能完全丧失的第一突变和导致LOX-2活性功能完全丧失的第二突变外，还包含一个或多个其它有用的突变。

附图说明

图1显示了如何繁殖NaN₃-诱变的大麦粒的一个实例。M0代的麦粒生长成为产生M1代麦粒的植物。可以播种这些麦粒用于形成产生M2代新麦粒的M1植物。接着，培育M2代植物并产生M3代麦粒。可以使M3代麦粒萌芽，用于例如分析萌芽M3植物的胚鞘。此外，还可以将源于M3植物的麦粒的花用在与大麦系或栽培品种的杂交中以获得M4代植物。类似的附图显示在Breddam，K.等人的PCT专利申请WO2005/087934的图1A中。

图2显示了用于亚油酸至T2N的转化和降解的生化通路的图示。LOX-1主要催化亚油酸转化为9-HPODE，9-HPODE被酶促降解为顺式壬烯醛。该化合物经自发的化学异构化成为T2N。LOX-2主要催化亚油酸转化为13-HPODE，13-HPODE可以转化为2-E-己烯醛(未显示)。

图3显示了优选的啤酒生长工艺的简化图示概要，其包括浸泡大麦谷粒(1)、发芽(2)、烘于(3)、研磨干燥的麦芽(4)、糖化(5)、过滤(6)、在添加酒花的情况下煮沸麦芽汁(7)、在存在酵母的情况下发酵(8)、啤酒熟化(9)、啤酒过滤(10)、包装，例如包装到瓶、罐等中(11)和贴标签(12)。这些独立的步骤可以分组成包括生产麦芽(1-3)、生产麦芽汁(4-7)、发酵(8-9)和制备成品啤酒(10-12)的部分。虽然图示的是优选的方法，但也可以涉及省略一些所述步骤(例如可以省略过滤或者可以不加入酒花)，或者加入额外步骤(例如添加辅料、糖、糖浆或碳酸盐)的其他方法。

图4显示了M3代(A)、M4代(B)和M5代(C)的萌芽麦粒中总LOX活性的比较结果。在从双无效LOX突变体A689、LOX-1无效突变体D112和LOX-1无效育种系Ca211901的萌芽麦粒分离的胚的提取物中测定所述活性。将相同样本的热失活提取物试样作为试验对照[C中：LOX-1无效原始突变体D112(^*)，LOX-1无效育种系Ca211901(^**)]。还显示了所分析的植物样本的LOX-1和LOX-2基因型(wt：野生型)。

图5显示了用于测定萌芽48小时的大麦胚中形成的9-HPODE和13-HPODE的HPLC分析的色谱图。通过测定234nm的吸光度来检测HPODE，结果以相对吸光度单位(AU)表示。与9-HPODE和13-HPODE对应的洗脱谱的峰用箭头显示。(A)9-HPODE和13-HPODE标准品的色谱图。(B)在由LOX-1无效突变体D112的萌芽胚制备的提取物中形成的HPODE的色谱图。(C)在由双无效LOX突变体A689(M4代)的萌芽胚制备的提取物中形成的HPODE的色谱图。

图6显示了用于测定微发芽(micro-malted)72小时的麦粒的胚中形成的9-HPODE和13-HPODE的HPLC分析的色谱图。通过测定234nm的吸光度来检测HPODE，结果以相对吸光度单位(AU)表示。与9-HPODE和13-HPODE对应的洗脱谱的峰用箭头显示。(A)在野生型cv.Barke中形成的9-HPODE和13-HPODE的色谱图。(B)在LOX-1无效突变体D112的胚的提取物中形成的HPODE的色谱图。(C)在双无效LOX突变体A689(M5代)的提取物中形成的HPODE的色谱图。

图7显示了在野生型大麦cv.Power、LOX-1无效突变体D112和突变体A689的三个潜在双无效LOX系(M5代)的微发芽样本中形成的游离T2N的水平。图中还包括所分析的大麦样本的LOX-1和LOX-2基因型(wt：野生型)。

图8显示了在由野生型cv.Power、LOX-1无效突变体D112和双无效LOX突变体A689(M5代)的微发芽麦粒产生的煮沸麦芽汁样本中形成的游离T2N的水平。还显示了所分析的大麦样本的LOX-1和LOX-2基因型(wt：野生型)。

图9显示了在由野生型cv.Power、LOX-1无效突变体D112和双无效LOX突变体A689(M5代)的微发芽麦粒产生的煮沸麦芽汁样本中的T2N前体水平。

图10显示了在利用cv.Power、LOX-1无效突变体D112和双无效LOX突变体A689的麦芽的200升规模的酿造试验中产生的啤酒中的T2N前体水平。显示了所使用的麦芽的LOX-1和LOX-2基因型(wt：野生型)。

图11显示了从通过大麦酿造产生的，或者通过常规发芽和糖化产生的200升规模的煮沸麦芽汁中采集的所示样本的试样中游离T2N水平的比较。显示了所使用的原材料的LOX-1和LOX-2基因型(wt：野生型)。

图12显示了从通过大麦酿造产生的，或者通过常规发芽和糖化产生的200升规模的煮沸麦芽汁(参见图11)中采集的所示样本的试样中T2N前体水平的比较。还显示了所使用的原材料的LOX-1和LOX-2基因型(wt：野生型)。

图13显示了利用所示大麦栽培品种和突变体作为原材料的200升规模的酿造试验获得的啤酒中T2N的形成。(A)单独的大麦酿造啤酒分析，集中于强制老化(forced aging)过程中游离T2N的形成。水平虚线表示T2N的品尝阈值水平(50ppt)。在独立试验中比较了大麦酿造和常规酿造的新鲜啤酒中T2N前体的水平(B)；在(C)中显示了与在37℃下保藏2周后的啤酒中游离T2N水平(黑柱)相比，新鲜啤酒中游离T2N的水平(白柱)。还显示了所使用的原材料的LOX-1和LOX-2基因型(wt：野生型)。

图14显示了在大麦酿造啤酒(A)和利用正常麦芽生产的啤酒(B)中THA的水平和比例的比较。9，12，13-THA和9，10，13-THA分别通过LOX-1和LOX-2通路的部分未知的反应产生。

图15显示了利用cv.Power(黑柱)、LOX-1无效(灰柱)和双无效LOX(白柱)原料的200升规模的大麦酿造啤酒中，随时间形成的“纸质”异味(A)和“老化”异味的图示。专业啤酒品尝小组利用0(无异味)至5(异味极大)的评分对啤酒进行了评价。

图16显示了在大麦酿造啤酒(A)和基于麦芽的啤酒(B)中如何形成泡沫。在这两个试验中，利用商业化的储藏啤酒作为对照(粗虚线)，对利用cv.Power(细虚线)、LOX-1无效(细实线)和双无效LOX(粗实线)为原料生产的啤酒进行了比较。

图17显示了大麦基因组基因LOX-2的结构，集中于跨越起始密码子(ATG)和终止密码子(TAA)的区域。发现这个3229-bp序列由6个外显子(实心框)和5个内含子(线)组成。双无效LOX突变体A689中经鉴定的LOX-2基因的突变用垂直箭头表示。值得注意的是，双无效LOX突变体A689在LOX-1基因中还包含提前终止密码子(参见美国专利第7,420,105号图15例示的突变体D112)。

图18显示了基因型分析如何能够用于鉴定LOX无效突变体。焦点涉及双无效LOX大麦植物的SNP辅助检测，即实现LOX-1基因的第3474位的G→A突变和LOX-2基因的第2689位的G→A突变的组合检测的方式。(A)利用所示引物对由所示模板DNA扩增的PCR片段(即，可以使用引物FL1035和FL1039扩增野生型LOX-2基因，而可以使用引物FL1034和FL1039扩增无效LOX-2突变基因)的琼脂糖凝胶电泳图。(B)说明在存在所述无效LOX突变的情况下，分别利用引物对FL820和FL823(包含与如星号所示的无效LOX-1特异性突变互补的3’碱基)，和引物对FL1034(包含与如星号所示的无效LOX-2突变互补的3’碱基)和FL1039的PCR如何能够产生166bp和200bp的PCR产物的示意图。(C)标准DNA(泳道1和4)以及利用上述用于检测无效LOX-1和无效LOX-2突变的引物组合，对双无效LOX突变体A689进行PCR扩增的DNA(泳道2)的琼脂糖凝胶电泳结果的描述。野生型大麦的PCR反应不产生相应的PCR产物(泳道3)。

图19显示了对双无效LOX大麦杂交的子代植物进行SNP辅助分析的实例。(A)利用上文图18详述的引物组合(即，用于基于PCR的无效LOX-1和无效LOX-2突变检测的引物)的示意图。从左开始的第一泳道(如泳道下方所示的条带号“a”)不包含表示存在所述两个突变的特异性PCR产物[即两个模板区具有野生型(W)序列]，而下一泳道(条带号“b”)突出显示了源自无效LOX-1突变植物(M)的PCR产物。第三泳道(条带号“c”)源自LOX-2无效植物，第四泳道(条带号“d”)源自双无效LOX植物。(B)野生型、LOX-1无效、LOX-2无效和双无效LOX大麦基因型的琼脂糖凝胶电泳。对上文(A)中描述的条带图的分析表明，泳道2、6、10、12、18和22含有从携带了无效LOX-1突变的植物扩增的产物(泳道下方标有“b”)；而泳道1、3、9、11、19、21和23含有从携带了无效LOX-2突变的植物扩增的产物(泳道下方标有“c”)。泳道7、15和17含有来自携带了LOX-1和LOX-2基因突变组合的双无效LOX植物的产物(泳道下方标有“d”)。泳道4、5、8、13、14、16和20不含从具有任一无效LOX等位基因的植物扩增的产物(泳道下方标有“a”)，即所述植物的所测序列是野生型的。标准DNA在标记为“MW”的泳道分离。

发明详述

定义

在随后的说明书、附图和表格中使用了许多术语。为了提供包括给出这些术语的范围的说明书和权利要求书，提供了下列定义：

本文使用的“一”可以指一个或多个，这取决于其使用的上下文。

术语“农学特征”描述了有助于形成所述植物的性能或经济价值的植物表型或遗传特征。这种特征包括抗病性、抗虫性、抗病毒性、抗线虫性、耐旱性、高盐度耐受性、产量、株高、成熟天数、麦粒分级(即麦粒的大小分级)和麦粒的含氮量等。

“反义核苷酸序列”指方向与核苷酸序列正常编码的5′-3′方向相反的序列。当存在于植物细胞中时，反义DNA序列优选降低内源基因核苷酸序列的正常表达，并且可以破坏对应天然蛋白的产生。在大麦植物中，反义核苷酸的表达通常仅降低所述天然蛋白的表达但不抑制其表达。

与啤酒和基于大麦的饮料的制造工艺相关，特别是用于描述发芽(malting)过程时，术语“大麦”是指大麦粒。在其它所有情况下，除非另有说明，否则“大麦”是指包括任何培育品系或栽培品种或变种(variety)在内的大麦植物(Hordeum vulgare，L.)，而大麦植物的部分可以是大麦植物的任何部分，例如任何组织或细胞。

“抗病性”指植物避免出现作为植物病原体相互作用的结果的疾病症状。这样阻止了病原体引起植物疾病和相关的疾病症状。或者，由病原体引起的疾病症状被减到最小，或降低，甚至被预防。

本文使用的术语“双无效LOX”是指完全丧失LOX-1活性功能并且完全丧失LOX-2活性功能。因此，“双无效LOX”可以表征为完全丧失功能性LOX-1酶和完全丧失功能性LOX-2酶。因此，“双无效LOX大麦植物”是包含导致LOX-1活性功能完全丧失的第一突变和导致LOX-2活性功能完全丧失的第二突变的大麦植物。因此，“双无效LOX大麦植物”可以表征为完全丧失功能性LOX-1酶和完全丧失功能性LOX-2酶。类似地，“双无效LOX麦粒”是包含导致LOX-1活性功能完全丧失的第一突变和导致LOX-2活性功能完全丧失的第二突变的麦粒，等等以此类推。因此，“双无效LOX麦粒”可以表征为完全丧失功能性LOX-1酶和完全丧失功能性LOX-2酶。

在本文中定义的“谷类”植物是禾本科(Graminae)植物家族的成员，其中种植禾本科植物主要是为了获取其含淀粉的种子或麦粒。谷类植物包括，但不限于大麦(Hordeum属)、小麦(Triticum属)、稻(Oryza属)、玉米(Zea属)、黑麦(Secale属)、燕麦(Avena属)、高粱(Sorghum属)和黑小麦(Triticale，黑麦-小麦杂交种)。

在有关特定核酸的上下文中，“编码”或“编码的”表示包含用于翻译成特定蛋白的信息。编码蛋白的核酸或多核苷酸可以包含位于核酸翻译区中的非翻译序列(例如内含子)，或者可以缺乏这种插入的非翻译序列(例如在cDNA中)。利用密码子对编码蛋白的信息进行说明。

本文在有关核酸的上下文中使用的“表达”应理解为来源于核酸片段的正义mRNA或者反义RNA的转录和累积。在有关蛋白的上下文中使用的“表达”指将mRNA翻译成多肽。

术语“基因”指参与产生多肽链的DNA片段；其包括在编码区之前和之后的区域(启动子和终止子)。此外，植物基因通常由被内含子中断的外显子组成。在转录成RNA之后，通过剪接除去内含子以产生成熟的信使RNA(mRNA)。通常通过充当剪接过程的剪接信号的共有序列确定外显子和内含子之间的“剪接位点”，剪接过程由从初级RNA转录本删除内含子和在切除去内含子的任一侧连接或融合剩余RNA的末端组成。在一些情况下，可选或不同的剪接模式可以从同一单个DNA延伸段产生不同的蛋白质。天然基因被可以称为“内源基因”。

本文使用的“异源”在指核酸时表示来源于外来物种的核酸，或者如果源于相同物种，则是通过人为干预在组成和/或基因组位点方面对其天然形式进行充分修饰的核酸。

本文使用的术语“萌芽(germination)”表示大麦粒在各种组合物中，例如在见于自然界的普通土壤中开始或恢复生长。因此，萌芽胚是正在萌芽的胚。萌芽也可以在置于培养室等的盆内土壤中进行，或者，例如可以在置于标准实验室皮氏培养皿的湿过滤纸上进行，或者在发芽(malting)的过程中进行(例如麦芽制造厂的浸泡罐或萌芽盒内进行)。按照一般理解，萌芽包括麦粒的水合作用、麦粒的膨胀和诱导胚生长。影响萌芽的环境因素包括湿度、温度和氧水平。观察根和芽的发育。

本文使用的术语“分离(的)”表示所述物质是从其原始环境中移出的。例如，存在于活生物中的天然存在的多核苷酸或者多肽不是分离的，而与天然系统中的一些或全部共存物质分开的相同多核苷酸或多肽是分离的。这种多核苷酸可以是载体的一部分和/或这种多核苷酸或者多肽可以是组合物的一部分，但它们仍然是分离，原因是这种载体或组合物不是其天然环境的一部分。

术语“麦粒”被定义为包括谷类颖果，也称为内部种子(internal seed)、外稃和内稃。在大多数大麦品种中，外稃和内稃附着于颖果上，而且是脱粒后的麦粒的一部分。但是，还存在裸麦(naked barley)品种。在这些品种中，颖果没有外稃和内稃，因此像小麦一样脱粒。术语“麦粒”和“谷粒”在本文中可以互用。

“谷粒发育”是指开始于花粉细胞对卵细胞受精的过程。在受精过程中，借助或不借助液泡寻靶(vacuole targeting)而将代谢储备物(例如糖、寡糖、淀粉、酚类、氨基酸和蛋白)储藏至麦粒(谷粒)的各种组织，例如胚乳、外种皮、糊粉和角质鳞片，由此导致麦粒(谷粒)膨胀，麦粒(谷粒)饱满，并且结束于麦粒(谷粒)干燥。

术语“功能完全丧失”(完全丧失功能)是指缺乏给定酶活性。因此，LOX-1和LOX-2活性“功能完全丧失”的大麦植物是没有可检测到的LOX-1和LOX-2活性的大麦植物。虽然LOX-1和LOX-2可具有其它活性，但在本发明中，LOX-1和LOX-2活性是通过测定由亚油酸形成9-HPODE和13-HPODE的试验过程确定的。优选地，按照下文实施例4的描述测定由亚油酸形成的9-HPODE和13-HPODE。应该利用萌芽胚的蛋白提取物测定所述活性。在本发明中，当利用亚油酸作为底物，产生出的色谱峰对应于小于5％、优选小于3％的图5A所示的标准品9-HPODE峰，和/或产生出的色谱峰对应于小于5％，优选小于3％的图5A所示的标准品13-HPODE峰，则认为在使用实施例4所述的试验时，没有可检测到的LOX-1和LOX-2活性。实现LOX活性功能完全丧失的分子方法包括产生引起所述酶的转录本完全缺失或相应的编码酶完全缺失的突变，或者产生使所编码的酶完全失活的突变。

术语“LOX-1活性”是指大麦LOX-1酶的酶活性。特别地，在本发明中，“LOX-1活性”是由亚油酸至9-HPODE且较小程度地至13-HPODE的酶促双加氧作用。尽管LOX-1能够催化其它反应，但为了确定本发明的LOX-1的活性，仅应考虑形成9-HPODE和13-HPODE的活性。图2概述了亚油酸被转化为9-HPODE的生化通路。

术语“LOX-2活性”是指大麦LOX-2酶的酶活性。特别地，在本发明中，“LOX-2活性”是由亚油酸至13-HPODE且较小程度至9-HPODE的酶促双加氧作用。尽管LOX-2能够催化其它反应，但为了确定本发明的LOX-2的活性，仅应考虑形成13-HPODE和9-HPODE的活性。图2概述了亚油酸被转化为13-HPODE的生化通路。

术语“麦芽饮料”或者术语“基于麦芽的饮料”是指利用麦芽制备的饮料，优选通过包括用热水温育麦芽的步骤的方法制备的饮料。麦芽饮料可以为，例如啤酒或无酒精麦芽饮料(maltinas)。

术语“发酵的麦芽饮料”是指已经发酵的，即与酵母温育的麦芽饮料。

“(麦粒)发芽”是在包括但不限于麦芽制造厂的浸泡池和萌芽箱内的受控环境条件下进行的特殊萌芽形式。根据本发明的方法，发芽在浸泡大麦粒期间和/或已经浸泡大麦粒之后开始发生。可以通过干燥大麦粒，例如在烘干过程中停止发芽过程。在还没有烘干的情况下，麦芽被称为“绿色麦芽”。应理解，由双无效LOX大麦制备的麦芽组合物包含双无效LOX麦芽，例如纯的双无效LOX麦芽或者包含双无效LOX麦芽的任何麦芽混合物。可以对麦芽进行加工，例如通过碾磨而加工，并由此被称为“经碾磨的麦芽”或“面粉”。

“糖化”是经碾磨的麦芽在水中的温育。优选在特定温度和特定体积的水中进行糖化。水的温度和体积是重要的，因为其影响来源于麦芽的酶活性的下降速率，并由此特别影响能够发生的淀粉水解的量；蛋白酶作用也可具有重要性。糖化可以在辅料存在下发生，应该理解辅料包含除麦芽以外的任何碳水化合物源，例如但不限于作为完整麦粒或者经加工的产品(例如粗面粉或淀粉)的大麦(包括双无效LOX大麦)、大麦糖浆或玉米或水稻。上文提及的所有辅料都主要用作提取物的其它来源(在麦芽汁煮沸的过程中常添加糖浆)。酿酒厂内辅料的加工要求取决于使用的辅料的状态和类型，并且特别是淀粉胶化或液化的温度。如果胶化温度超过正常的麦芽糖化温度，则淀粉在添加至醪液(mash)中之前就被胶化和液化。

“突变”包括基因的编码和非编码区的缺失、插入、取代、颠换(transversion)和点突变。缺失可以是整个基因或者仅基因的一部分的缺失，其中，非编码区优选为启动子区或者终止区或者内含子。点突变可涉及一个碱基或者一个碱基对的变化，并且可产生终止密码子、移框突变或氨基酸取代。体细胞突变是指仅发生在植物的某些细胞或组织中的且不遗传至下一代的那些突变。生殖细胞突变可以见于植物的任何细胞中并且是遗传的。参考本文的图1，其显示了在育种程序中如何繁殖突变大麦谷粒的概述，M3代谷粒和其直接繁殖的谷粒或者包括其植物在内的任意子代可以称为“原始突变体(rawmutant)”。此外，仍然参照本文图1，术语“育种系”是指M4代的谷粒和包括其植物在内的任意子代，其可能是与栽培品种植物的杂交结果，或者是与具有单独的特定特征的另一育种系杂交的结果。

术语“无效LOX(或LOX无效)”是指LOX编码基因中存在引起所编码的LOX酶(LOX-1或LOX-2)的功能完全丧失的突变。在LOX编码基因中产生提前终止(无义)密码子的突变仅代表能够实现LOX活性功能完全丧失的一种机制。实现LOX酶的功能完全丧失的分子方法包括产生引起所述酶的转录本完全缺失的突变，或者引起所编码的酶完全失活的突变。与植物有关的“无效LOX(或LOX无效)”是指指定LOX酶的功能完全丧失的植物。

“可操作地连接”是用以指两个或更多个核酸片段在单个多核苷酸上的关联，从而使一个片段的功能受另一个的影响的术语。例如，当启动子能够影响编码序列的表达，即编码序列位于启动子的转录控制下时，启动子可操作地与编码序列连接。可以以正义或反义方向将编码序列可操作地与调节序列连接。

“PCR”或“聚合酶链式反义”是本领域技术人员熟知的用于扩增特定DNA片段的技术(Mullis，K.B.等人的美国专利第4,683,195和4,800,159号)。

“植物”或“植物材料”包括植物细胞、植物原生质体和可以再生出大麦植物的植物细胞组织培养物，包括植物愈伤组织和在植物中的完整植物细胞，或植物部分，例如胚、花粉、胚珠、花、麦粒、叶、根、根尖、花药，或植物的任何部分或产品。

术语“植物产品”表示由植物或植物部分的加工产生的产品。因此例如，所述植物产品可以是麦芽、麦芽汁、发酵或未发酵饮料、食品或饲料产品。

本文使用“重组体”涉及蛋白时表示源于外来物种的蛋白，或者如果来源于相同物种，则表示通过有意的人为干预对其天然形式的组成进行充分修饰的蛋白。

本申请含义内的“啤酒品尝专家小组”是在品尝和表述啤酒风味(主要集中于醛、纸样味道和陈旧(old)味道)方面受过全面训练的专家小组。虽然存在许多用于评价风味成分的分析工具，但难以通过分析来评价风味活性组分的相对显著性。但是，此类复杂的性质可以由品尝专家进行评价。品尝专家的持续训练包括品尝并评价标准啤酒样本。

术语“剪接位点”表示基因的外显子和内含子之间的界限。因此，剪接位点可以是从外显子至内含子的边界(被称为“供体位点”)，或者是从外显子分隔内含子的边界(被称为“受体位点”)。植物的剪接位点通常包括共有序列。内含子的5′末端通常由保守性GT二核苷酸(mRNA中为GU)组成，内含子的3′末端通常由保守性二核苷酸AG组成。因此，内含子的5′剪接位点包含内含子的5′末端，而3′剪接位点包含内含子的3′末端。优选地，在本发明中，内含子的剪接位点是由内含子的最5′端的二核苷酸(通常为GT)组成的5′剪接位点，或者由内含子的最3′端的二核苷酸(通常为AG)组成的3′剪接位点。

除非另有指明，否则“T2N”表示游离形式的反式-2-壬烯醛(T2N)。T2N有时还指2-E-壬烯醛。

术语“T2N潜能(T2N potential)”描述的是能够在一个或多个反应中释放T2N，或者被转化成T2N的化学物质。在本发明中，T2N潜能被定义为在100℃、pH4.0温育2小时的过程中释放至溶液，例如麦芽汁或者啤酒中的T2N的浓度。实际上，测定起始T2N浓度，之后使溶液在100℃、pH4温育2小时，然后测定T2N浓度。起始T2N浓度和最终T2N浓度之间的差异被称为T2N潜能。热处理、酸性处理引起T2N潜能例如“T2N加合物”释放T2N，其中T2N加合物用以描述与一种或多种物质，包括但不限于蛋白、亚硫酸盐、细胞碎片或细胞壁等结合的T2N。T2N加合物本身通常不会被人感觉为异味。但是，从所述T2N加合物释放的T2N可以产生异味。

“组织培养物”表示包含相同或不同类型的分离细胞的组合物，和组织成为植物的部分(例如原生质体、愈伤组织、胚、花粉和花药等)中的那些细胞的集合。

“转化”指将DNA插入生物体中以便将DNA作为染色体外元件(没有整合并稳定遗传)或染色体组成部分(在遗传学上稳定遗传)保持。除非另有说明，否则本文用于转化大肠杆菌的方法是基于CaCl₂的方法(Sambrook and Russel，见上文)。为了转化大麦，除了使用另一个栽培种类作为宿主外，优选按照Tingay等人(1997)和Wang等人(2001)的描述进行农杆菌介导的转化。

“转基因”是通过转化过程导入基因组的基因。

本文使用的“转基因的”包括是指已经通过引入异源核酸而被修饰的细胞，或由如此修饰的细胞衍生而来的细胞。因此，例如，转基因细胞表达未以相同形式见于天然形式的细胞中的基因，或者表达由于有意的人为干预而异常表达、低表达或根本不表达的天然基因。本文使用的与植物，特别是大麦植物有关的术语“转基因”不包括通过传统植物育种方法，例如基于NaN₃的诱变，以及通过没有刻意人工干预的天然发生事件产生的细胞改变。

术语“野生大麦”，即Hordeum vulgare ssp.spontaneum被认为是当今栽培形式大麦的祖先。认为大麦从野生至栽培状态的转变与该植物向“大麦当地品种”的驯化同时发生。这些大麦当地品种在遗传上比野生大麦更接近于现代栽培品种。

术语“野生(型)”大麦是指按照传统方式产生的大麦植物。优选地，所述术语是指已经衍生出本发明大麦植物的大麦植物，即亲本植物。野生型大麦粒通常可作为“栽培品种”或“变种/品种”(即那些由国家植物育种组织列出的在遗传上相似的麦粒)而获自例如种子公司。尽管可以获得几个LOX-1无效大麦栽培品种(例如cv.Chamonix和cv.Charmay)，但为了更好地理解本发明，所有的LOX-1无效、LOX-2无效和双无效LOX植物在本文中都被认为是突变植物而非野生型植物。术语“栽培品种”和“变种”在本文中可互换使用。

术语“麦芽汁”表示麦芽，例如碾磨麦芽或绿色麦芽或者碾磨的绿色麦芽的液体提取物。在大麦酿造中，麦芽汁还可以通过将未发芽大麦的提取物与水解大麦成分的酶混合物一起温育而制备。除所述麦芽或源自大麦的提取物外，还可以由麦芽和额外的成分，例如部分转化为可发酵糖的其它含淀粉物质制备所述液体提取物。麦芽汁通常通过糖化，随后任选的“喷射提取(sparging)”(即在用热水糖化后从用过的谷粒提取残留糖和其它化合物的过程)而获得。喷射提取通常在滤桶、麦芽浆过滤器或可以从用过的谷粒分离提取水的另一种设备内进行。糖化后获得的麦芽汁通常被称为“第一麦芽汁”，而喷射提取后获得的麦芽汁通常被称为“第二麦芽汁”。如非特别指明，术语麦芽汁可以是第一麦芽汁、第二麦芽汁或者二者的组合。在啤酒生产过程中，麦芽汁通常与酒花一起煮沸。没有与酒花一起煮沸的麦芽汁还可以称为“甜麦芽汁”，而与酒花一起煮沸的麦芽汁可被称为“煮沸的麦芽汁”。

大麦植物

大麦是一类植物。“野生大麦”(Hordeum vulgare ssp.Spontaneum)被认为是当今栽培大麦的祖先。认为大麦从野生态至栽培态的转变与多个基因座的等位基因频率的重要变化同时发生。农场主积极选择稀少的等位基因和新突变事件，并很快在称作“大麦当地品种”的驯化植物群体中确立新特征。与野生大麦相比，这些大麦在遗传上与现代栽培品种更密切相关。直至十九世纪晚期，大麦当地品种才作为近交系和杂种分离子的高度异源混合物出现，其包括由较早世代的随机杂交而来的少数植物。在现代农业中，大多数当地品种已经被纯系栽培品种取代。剩余当地品种的特征在于中等水平或高水平的遗传多样性。最初，“现代大麦”栽培品种代表了自当地品种的选择。后来，这些栽培品种来源于确定的纯系，例如不同地理来源的纯系之间连续多轮的杂交。最后，导致在许多，也可能是所有现代农作物的遗传基础显著缩小。与当地品种相比，现代大麦栽培品种有多个改良的性质(Nevo，1992；vonBothmer等人，1992)，例如但不限于以下：

(i)隐藏和裸露的麦粒；

(ii)种子休眠；

(iii)抗病性；

(iv)环境耐受性(例如对干旱或土壤pH的耐受性)；

(v)赖氨酸和其它氨基酸的比例；

(vi)蛋白含量；

(vii)氮含量；

(viii)碳水化合物组成；

(ix)大麦醇溶蛋白的含量和组成；

(x)(1-3，1-4)-β-葡聚糖和阿拉伯糖基木聚糖的含量；

(xi)产率

(xii)麦秆硬度；

(xiii)株高。

在本发明中，术语“大麦植物”包括任何大麦植物。因此，本发明涉及包含导致LOX-1活性功能完全丧失的第一突变和导致LOX-2活性功能完全丧失的第二突变的任何大麦植物。因此，本发明涉及包含导致功能性LOX-1酶完全丧失的第一突变和导致功能性LOX-2酶完全丧失的第二突变的任何大麦植物。

然而，优选用于本发明的大麦植物是现代大麦栽培品种或纯系。本发明使用的大麦栽培品种可以是，例如选自Sebastian、Celeste、Lux、Prestige、Saloon、Neruda、Harrington、Klages、Manley、Schooner、Stirling、Clipper、Franklin、Alexis、Blenheim、Ariel、Lenka、Maresi、Steffi、Gimpel、Cheri、Krona、Camargue、Chariot、Derkado、Prisma、Union、Beka、Kym、Asahi 5、KOU A、Swan Hals、Kanto Nakate Gold、Hakata No.2、Kirin-choku No.1、Kanto late Variety Gold、Fuji Nijo、New Golden、Satukio Nijo、Seijo No.17、Akagi Nijo、Azuma Golden、Amagi Nijpo、Nishino Gold、Misato golden、Haruna Nijo、Scarlett和Jersey组成的组，优选来自Haruna Nijo、Sebastian、Celeste、Lux、Prestige、Saloon、Neruda和Power组成的组，优选来自Harrington、Klages、Manley、Schooner、Stirling、Clipper、Franklin、Alexis、Blenheim、Ariel、Lenka、Maresi、Steffi、Gimpel、Cheri、Krona、Camargue、Chariot、Derkado、Prisma、Union、Beka、Kym、Asahi 5、KOU A、Swan Hals、Kanto Nakate Gold、Hakata No.2、Kirin-choku No.1、Kanto late Variety Gold、Fuji Nijo、NewGolden、Satukio Nijo、Seijo No.17、Akagi Nijo、Azuma Golden、AmagiNijpo、Nishino Gold、Misato golden、Haruna Nijo、Scarlett和Jersey组成的组，优选来自Haruna Nijo、Sebastian、Tangent、Lux、Prestige、Saloon、Neruda、Power、Quench、NFC Tipple、Barke、Class和Vintage组成的组。

因此，在本发明的一个实施方式中，所述大麦植物是包含导致LOX-1活性功能完全丧失(例如功能性LOX-1酶完全丧失)的第一突变和导致LOX-2活性功能完全丧失(例如功能性LOX-2酶完全丧失)的第二突变的当代大麦栽培品种(优选选自上文描述的大麦栽培品种组的栽培品种)。因此，在该实施方式中，优选所述大麦植物不是大麦当地品种。

所述大麦植物可以是任何适合的形式。例如，本发明的大麦植物可以是能活的大麦植物、干燥的植物、均质化的植物或者经碾磨的大麦粒。所述植物可以是成熟的植物、胚、萌芽的麦粒、发芽的麦粒或经碾磨的发芽麦粒等。

大麦植物的部分可以是所述植物的任何合适的部分，例如麦粒、胚、叶、茎、根、花或其小部分(fraction)。所述小部分可以是，例如麦粒、胚、叶、茎、根或花的部分。大麦植物的部分还可以是匀浆的小部分或者经碾磨的大麦植物或麦粒的小部分。

在本发明的一个实施方式中，大麦植物的部分可以是所述大麦植物的细胞，优选可以在体外组织培养物中繁殖的活细胞。特别地，在一个实施方式中，所述细胞可以是不能成熟为完整大麦植物的细胞，即不是生殖物质的细胞。

LOX活性功能的丧失

本发明涉及具有第一突变和第二突变的大麦植物或其部分或其植物产品，其中所述第一突变导致LOX-1活性功能完全丧失，所述第二突变导致LOX-2活性功能完全丧失。因此，例如，第一突变导致功能性LOX-1酶完全丧失，第二突变导致功能性LOX-2酶完全丧失。

LOX-1活性功能完全丧失(例如功能性LOX-1酶完全丧失)和LOX-2活性功能完全丧失(例如功能性LOX-2酶完全丧失)可独立地基于不同的机制。例如，LOX-1活性和LOX-2活性中的一个或两个的功能完全丧失可以由大麦植物中的异常蛋白，即异常LOX-1和/或LOX-2蛋白引起，例如由没有可检测到的9-HPODE形成活性的突变LOX-1蛋白(例如按照实施例4中的描述进行测定)引起，和/或由没有可检测到的13-HPODE形成活性的突变LOX-2蛋白(例如按照实施例4中的描述进行测定)引起。

LOX-1活性和LOX-2活性中的一个或两个的功能完全丧失可以由LOX-1蛋白和/或LOX-2蛋白的缺乏引起。明显地，LOX-1蛋白的缺乏将导致功能性LOX-1酶丧失，而LOX-2蛋白的缺乏将导致功能性LOX-2酶完全丧失。因此，所述大麦植物可优选不包含，或仅包含非常少的LOX-1和/或LOX-2蛋白，更优选其中没有可检测到的LOX-1和/或LOX-2蛋白。LOX-1和/或LOX-2蛋白可以由本领域技术人员已知的任何合适的方式进行检测。然而，优选通过其中利用LOX-1和LOX-2的特异性抗体(例如LOX-1和LOX-2的多克隆抗体)检测LOX-1蛋白的技术对所述蛋白进行检测。所述技术可以是，例如Western印迹或ELISA。所述抗体可以是单克隆抗体或多克隆抗体。然而，优选所述抗体为分别识别LOX-1和LOX-2蛋白中的数个不同表位的多克隆抗体。还可以间接检测LOX-1和/或LOX-2蛋白，例如通过测定LOX-1活性的方法，或者通过测定LOX-2活性的方法。在本发明的一个优选实施方式中，利用国际专利申请WO 2005/087934的实施例4中列出的方法检测LOX-1蛋白。可以利用与LOX-2结合的抗体以类似的方式检测LOX-2蛋白。

LOX-1活性和LOX-2活性中的一个或两个的功能完全丧失还可以是没有或几乎没有表达LOX-1转录本和/或LOX-2转录本的结果，优选是没有表达LOX-1转录本和/或LOX-2转录本。本领域技术人员理解LOX-1或LOX-2转录本的缺失也将分别导致LOX-1或LOX-2翻译蛋白的缺失。或者，LOX-1活性和LOX-2活性中的一个或两个的功能完全丧失(例如功能性LOX-1和LOX-2酶完全丧失)也可以是表达异常的LOX-1转录本和/或异常的LOX-2转录本的结果。异常的LOX-1和/或LOX-2转录本可能是由转录本的异常剪接导致的，例如由于剪接位点的突变。因此，本发明的大麦植物可以具有位于剪接位点中的突变，例如位于5′剪接位点或3′剪接位点中，例如在内含子最5′端的一个或两个核苷酸中，或者在内含子最3′端的核苷酸之一中。LOX-1转录本具有异常剪接的突变的实例为WO2005/087934中描述的突变体A618。编码LOX-1或LOX-2的转录本的表达可以通过，例如Northern印迹或RT-PCR试验检测。

本发明的大麦植物功能性LOX-1和LOX-2酶的完全丧失是由突变引起的。因此，本发明的大麦植物通常在LOX-1基因中具有突变。所述突变可以在调节区内，例如在启动子或内含子内，或者所述突变可以在编码区内。类似地，本发明的大麦植物通常在LOX-2基因中具有突变。所述突变可以在调节区内，例如在启动子或内含子内，或者所述突变可以在编码区内。因此，还可以通过鉴定LOX-1编码基因中或者LOX-2编码基因中的突变而检测功能性LOX-1和/或LOX-2酶完全丧失的原因。LOX-1编码基因中的突变可以通过，例如对所述基因进行测序而检测。优选地，在鉴定所述突变后，通过测定LOX-1和/或LOX-2活性而验证功能的完全丧失。

术语“LOX-1蛋白”是指涵盖WO 2005/087934的SEQ ID NO：3或WO2005/087934的SEQ ID NO：7列出的大麦全长LOX-1蛋白或其功能同源物。LOX-1的活性位点位于所述酶的C末端部分。特别地，认为跨越氨基酸残基520-862的区域或其部分与LOX-1活性有关。因此，在一个实施方式中，LOX-1无效大麦优选包含编码缺失LOX-1氨基酸520-862中的部分或全部氨基酸的突变形式LOX-1的基因。所述突变LOX-1也可以缺失存在于野生型LOX-1中的其它氨基酸残基。

因此，本发明的双无效LOX大麦可以包含非功能性的截短形式的LOX-1，例如N-末端或C-末端被截短的形式。优选地，所述截短形式包含不超过800个，更优选不超过750个，甚至更优选不超过700个，还更优选不超过690个，甚至更优选不超过680个，还更优选不超过670个LOX-1的连续氨基酸，例如不超过650个，如不超过600个，例如不超过550个，如不超过500个，例如不超过450个，如不超过425个，例如不超过399个WO2005/087934的SEQ ID NO：3的LOX-1的连续氨基酸。优选地，所述截短形式仅包含LOX-1的N末端片段，优选最多800个，更优选最多750个，甚至更优选最多700个，还更优选最多690个，甚至更优选最多680个，还更优选最多670个，甚至更优选最多665个WO 2005/087934的SEQ ID NO：3的N-末端氨基酸，如包含不超过665个，例如不超过650个，如不超过600个，例如最多550个，如最多500个，例如最多450个，如最多425，例如最多399个WO 2005/087934的SEQ ID NO：3的N-末端氨基酸。

在一个非常优选的实施方式中，所述截短形式可以由WO 2005/087934的SEQ ID NO：3的氨基酸1-665组成。

在本发明的一个优选实施方式中，本发明的大麦植物包含被转录成mRNA的LOX-1编码基因，其中所述mRNA在野生型LOX-1 mRNA的终止密码子的上游包含无义密码子或者终止密码子。这种无义密码子在本文中被命名为提前终止的无义密码子。优选地，所述植物的所有转录成mRNA的LOX-1编码基因都包含提前终止的无义密码子或终止密码子。所述无义密码子或终止密码子优选位于起始密码子下游的最多800个，更优选最多750个，甚至更优选最多700个，还更优选最多690个，甚至更优选最多680个，还更优选最多670个，甚至更优选最多665个密码子处。编码LOX-1的野生型基因组DNA的序列示于WO 2005/087934的SEQ ID NO：1或者WO2005/087934的SEQ ID NO：5。

在一个优选的实施方式中，本发明的大麦植物包含编码LOX-1的基因，其中由所述基因转录的前mRNA包含与WO 2005/087934的SEQ ID NO：2对应的序列。

在本发明的非常优选的实施方式中，本发明的双无效LOX大麦植物的突变LOX-1的编码基因包含无义突变，所述突变对应于WO 2005/087934的SEQ ID NO：1的第3574位的G→A取代。

术语“LOX-2蛋白”表示涵盖本申请SEQ ID NO：5列出的大麦全长LOX-2蛋白或其功能同源物。LOX-2的活性位点位于LOX-2的C末端部分。特别地，认为跨越氨基酸残基515-717的区域或其部分与LOX-2的活性有关。根据大豆LOX-1晶体结构的检测，认为氨基酸残基515-525和707-717代表了大麦LOX-2酶的活性位点裂隙的序列延伸段。所翻译的突变LOX-2蛋白，即大麦双无效LOX突变体A689的C-末端截短形式，最多包含684个残基，并且因此缺失活性位点裂隙的第二序列延伸段，从而导致其失活。根据本发明的一个实施方式，本发明的双无效LOX大麦优选包含编码LOX-2的突变形式的基因，其中所述突变形式缺失LOX-2的氨基酸515-717中的一些或者全部氨基酸，优选缺失氨基酸707-717中的一些或全部氨基酸，甚至更优选缺失氨基酸707-717中的全部氨基酸。所述突变LOX-2还可以缺乏野生型LOX-2中存在的其它氨基酸残基。

因此，双无效LOX大麦可包含非功能性的截短形式的LOX-2，例如N-末端或C-末端被截短的形式。优选地，所述截短形式包含不超过800个，更优选不超过750个，甚至更优选不超过725，还更优选不超过700个，甚至更优选不超过690个，还更优选不超过684个本申请的SEQ ID NO：5的LOX-2的连续氨基酸。优选地，所述截短形式仅包含LOX-2的N-末端片段。因此，优选所述截短形式包含最多800个，更优选最多750个，甚至更优选最多725个，还更优选最多700个，甚至更优选最多690个，还更优选最多684个本申请的SEQ ID NO：5的N-末端氨基酸。

在一个非常优选的实施方式中，所述截短形式可以由本申请的SEQ IDNO：5的氨基酸1-684组成。

在本发明的优选实施方式中，所述大麦植物包含被转录成LOX-2的mRNA的基因，其中所述mRNA在野生型LOX-2 mRNA的终止密码子的上游包含无义密码子或者终止密码子。这种无义密码子在本文中被命名为提前终止的无义密码子。优选地，所述植物的转录成编码LOX-2的mRNA的所有基因都包含提前终止的无义密码子或终止密码子。所述无义密码子或终止密码子优选位于起始密码子下游的最多800个，更优选最多750个，甚至更优选最多725个，还更优选最多700个，甚至更优选最多690个，还更优选最多684个密码子处。编码LOX-2的野生型基因组DNA的序列示于本申请的SEQ ID NO：1。

在本发明的非常优选的实施方式中，所述双无效LOX大麦植物的突变LOX-2的编码基因包含无义突变，所述突变对应于SEQ ID NO：1的第2689位的G→A取代。

本发明的大麦植物可以由本领域技术人员熟知的任何合适的方法制备，优选通过下文“双无效LOX大麦的制备”部分列出的方法之一制备。

在本发明的一个实施方式中，优选本发明的双无效LOX大麦植物具有类似于野生型大麦的植物生长生理学和谷粒发育。因此，优选LOX-1无效大麦植物在株高、每株的分蘖数、开始开花和/或每穗的谷粒数方面类似于野生型大麦。

此外，优选本发明的双无效LOX大麦植物在株高、抽穗期、抗病性、抗倒伏、穗破损、成熟时间和产量方面类似于野生型大麦，特别是类似于cv.Barke。在本发明中，在表述数目的情况下，将“类似”理解为相同±10％。这些参数可以按照下文实施例5的描述进行测定。

在本发明的非常优选的实施方式中，所述大麦植物是已在2008年12月4日将其种子以“大麦，Hordeum vulgare L.；A689系(Barley，Hordeum vulgareL.；Line A689)”的名称保藏在美国标准培养物保藏中心(ATCC，美国马纳萨斯(VA 20110)大学街10801号专利保藏处，保藏编号PTA-9640)的大麦植物。因此，本发明的大麦植物可以大麦系A689(ATCC专利保藏名称：PTA-9640)，或其任何子代大麦植物。

制备大麦突变体

本发明的大麦植物可以通过本领域技术人员已知的任何合适的方法制备。优选地，本发明的大麦植物通过包括以下步骤的方法制备：诱变大麦植物或其部分(例如大麦粒)，然后筛选和选择特征在于LOX-1活性功能的完全丧失(例如功能性LOX-1酶完全丧失)和LOX-2活性功能的完全丧失(例如功能性LOX-2酶完全丧失)的大麦植物。在一个优选的实施方式中，所述大麦植物可以通过包括诱变大麦植物或其部分(例如大麦粒)的方法而制备，其中所述大麦植物已经具有引起功能性LOX-1酶完全丧失的突变。此类大麦植物描述在，例如国际专利申请WO2005/087934中。

在一个感兴趣的方面，本发明涉及新的且非常有效的筛选方法，其可以鉴定具有引起LOX-2活性完全丧失的突变的大麦植物。所述新的可重复的筛选方法可以鉴定没有LOX-2活性或者LOX-2活性非常低的大麦植物。这种新的筛选方法包括使用萌芽胚作为起始材料。有趣的是，根据多达21,000个成熟胚的筛选(其没有发现单个LOX-2无效大麦突变体)，本发明人发现使用成熟胚作为筛选LOX-2活性的起始材料较不优选。

因此，所述新筛选方法的一个重要特征涉及使用萌芽胚作为检测LOX-2活性的起始材料。

因此，本发明的目标是提供制备双无效LOX大麦植物的方法，其包括以下步骤：

(i)提供LOX-1活性功能完全丧失，例如功能性LOX-1酶完全丧失的大麦植物或其部分；和

(ii)诱变所述大麦植物，和/或来自所述大麦植物的大麦细胞，和/或大麦组织，和/或大麦粒，和/或大麦胚，由此获得M0代大麦；和

(iii)将所述诱变大麦植物、麦粒和/或胚培育至少2代，由此获得Mx代的大麦植物，其中x为≥2的整数；和

(iv)获得所述Mx大麦植物的胚；和

(v)使所述胚萌芽；和

(vi)测定所述萌芽胚或其部分中的LOX-1和LOX-2活性；和

(vii)选择所述萌芽胚中LOX-1活性和LOX-2活性完全丧失的植物；和

(viii)分析LOX-1基因和LOX-2基因中的突变；和

(ix)选择在LOX-1基因和LOX-2基因中具有突变的植物；

由此获得在LOX-1和LOX-2基因中具有引起LOX-1活性完全丧失和LOX-2活性完全丧失的突变的大麦植物。

上述LOX-1活性完全丧失的大麦植物可以是，例如WO2005/087934中描述的LOX-1活性完全丧失的任意大麦植物，优选D112突变体，或其子代植物。

上述列表中的步骤(ii)可以涉及诱变活的材料，其选自大麦植物、大麦细胞、大麦组织、大麦粒和大麦胚组成的组，优选选自大麦植物、大麦粒和大麦胚组成的组，更优选大麦粒。

可以通过任何适合的方法进行诱变。在一个实施方式中，通过将诱变剂和大麦植物或其部分一起温育，例如和大麦粒或来自大麦的单个细胞一起温育而进行诱变。这种诱变剂是本领域技术人员已知的，包括但不限于叠氮化钠(NaN₃)、甲磺酸乙酯(EMS)、叠氮丙三醇(AG，3-叠氮-1，2-丙二醇)、甲基亚硝基脲(MNU)和马来酰肼(MH)组成的组。

在另一个实施方式中，通过照射，例如通过紫外线照射大麦植物或其部分，例如麦粒来进行诱变。在本发明的优选实施方式中，依照下文“化学诱变”部分中列出的任何方法进行诱变。合适的诱变方案的非限制实例公开在实施例2中。

优选以以下方式进行诱变，即在筛选M3代的大麦时，期望突变体的预期频率达到每10,000谷粒最少0.5个，例如0.5-5个的范围，例如0.9-2.3个的范围。在优选的实施方式中，对大麦粒进行诱变。用于诱变的麦粒命名为M0代(另参见图1)。

可以在来自萌芽大麦胚的样本中，优选在来自萌芽大麦胚的液体提取物中测定LOX活性。所述样本，例如所述提取物可以由所述萌芽胚的任何合适部分制备。通常，在制备所述样本的提取物和测定LOX-2活性前，必须利用任何合适的方法对大麦样本进行匀质。特别地，优选蛋白提取物由萌芽胚或其部分制备，并且利用所述蛋白提取物测定LOX活性。可以利用，例如机械力，例如通过摇动或搅拌，如通过在存在珠(例如玻璃珠或沙珠)的情况下振荡而进行匀质。

在优选的实施方式中，所述萌芽胚为Mx代的，其中x是≥2整数，优选x是2-10的整数，更优选是3-8的整数。在非常优选的实施方式中，在M3代的萌芽胚中或者在源自此胚的样本中测定LOX活性。在该实施方式中，优选培育M0代的诱变大麦粒以获得大麦植物，并将所述大麦植物杂交以得到M1代麦粒。重复该过程直至获得M3代麦粒(另参见图1)。

可以利用任何合适的试验进行LOX活性测定，优选使用下文所列的方法之一。特别地，优选所述试验产生关于通过LOX-1和LOX-2的双加氧作用将亚油酸转化成9-HPODE和13-HPODE的数据。因此，所述试验通常包括以下步骤：

(i)提供由萌芽大麦胚或其部分制备的蛋白提取物；和

(ii)提供亚油酸；和

(iii)将所述蛋白提取物和所述亚油酸一起温育；和

(iv)测定亚油酸至9-HPODE和13-HPODE的双加氧作用。

所述方法的步骤(iv)优选包括测定所述萌芽胚中，优选由所述萌芽胚制备的蛋白提取物中的9-HPODE和13-HPODE水平。所述步骤可以包括直接或间接测定9-HPODE和13-HPODE的水平。可以测定所有HPODE的总水平，在此情况下优选为了验证而进行9-HPODE和13-HPODE的专门测定。一个方法可以是，例如其中使来自萌芽胚的蛋白提取物与作为底物的亚油酸一起温育用以形成9-HPODE和13-HPODE的方法。然后可以通过多种方法检测所述HPODE。一个方法可以包括产生可检测到的化合物，例如染料。例如，所述方法可以是在血红素存在下由所形成的HPODE催化的3-二甲基氨基苯甲酸和3-甲基-2-苯并噻唑啉酮腙的氧化偶联，以形成可以利用分光光度计在A₅₉₅测定的吲达胺染料。此方法的实例描述在下文的实施例1和2中。利用该实验，认为小于0.2A₅₉₅单位的吸光读数表示不存在LOX-1且不存在LOX-2活性。然而，用于测定LOX-1和LOX-2活性的更精确的方法是使来自萌芽胚的蛋白提取物和亚油酸一起温育，然后测定9-HPODE和13-HPODE的含量。9-HPODE和13-HPODE的含量可以通过，例如利用基于HPLC的分析而测定。

可以直接或间接测定亚油酸至9-HPODE和13-HPODE的双加氧作用。本发明可以使用任何合适的测定方法。在本发明的一个实施方式中，检测到亚油酸过氧化氢物。例如，可以通过例如色谱法，如实施例4描述的HPLC直接测定9-HPODE和13-HPODE。

本发明公开了用于从萌芽胚提取蛋白的方法的某些方面的显著重要性。因此，优选利用酸性缓冲液，优选pH为2-6的范围，更优选pH为3-5的范围，甚至更优选pH为3.5-5的范围，还更优选pH为4-5的范围，甚至更优选pH为4.5的酸性缓冲液提取所述蛋白。用于提取的缓冲液优选基于有机酸，更优选乳酸缓冲液。最优选地，利用100mM乳酸缓冲液(pH4.5)制备蛋白提取物。

本发明的某些实施方式公开了用于检测LOX-1无效和LOX-2无效植物的方法，所述方法包括9-HPODE和13-HPODE与染料(例如3-甲基-2-苯并噻唑啉酮腙)的反应。优选地，在加入亚油酸之后将所述染料(例如3-甲基-2-苯并噻唑啉酮腙)加入到蛋白提取物中。优选地，在使所述蛋白提取物与亚油酸接触至少1分钟，更优选至少5分钟，甚至更优选至少10分钟，例如1-60分钟的范围，例如5-30分钟的范围，例如10-20分钟的范围后加入所述染料。

优选用于选择本发明的大麦植物的方法详述在下文实施例2中。

所述选择方法可经调整用于基于微滴定板的分析程序或允许快速筛选许多样本的其它已知的高通量重复测定方式。优选分析至少5000株，例如至少7500株，例如至少10,000株，例如至少15,000，例如至少20,000，例如至少25,000诱变的大麦植物的LOX-1活性和LOX-2活性。

可以通过数个不同的方法测定LOX-1编码基因中的突变。例如，可以对LOX-1基因进行完全或部分地测序，并且将其序列与WO 2005/087934的SEQID NO：1或者WO 2005/087934的SEQ ID NO：5比较。如果寻找特异突变，可以采用SNP分析。本领域技术人员将能够设计可用于检测给定的特异突变的引物，例如用于检测在LOX-1的编码序列内产生提前终止密码子的突变(例如上文描述的任意提前终止密码子)的引物。如何进行SNP分析的一个实例描述在下文的实施例10中，其中的引物可用于检测在LOX-1基因的第3474位核苷酸的G→A突变。

可以通过数个不同的方法测定LOX-2编码基因中的突变。例如，可以对LOX-2基因进行完全或部分地测序，并且序列与本申请的SEQ ID NO：1比较。如果寻找特定突变，可以采用SNP分析。本领域技术人员将能够设计可用于检测给定的特定突变的引物，例如用于检测在LOX-2的编码序列内产生提前终止密码子的突变(例如上文描述的任意提前终止密码子)的引物。如何进行SNP分析的一个实例描述在下文的实施例10中，其中的引物可用于检测在LOX-2基因的第2689位核苷酸的G→A突变。

如上文该部分详述的双无效LOX大麦植物的制备方法的步骤(viii)和(ix)可以在步骤(vi)和(vii)之前进行，在这种情况下，所述方法将包括顺序依次为(i)、(ii)、(iii)、(iv)、(v)、(viii)、(ix)、(vi)和(vii)的步骤，这种方法也包含在本发明的范围之内。特别地，当寻找特异突变时，例如在已经鉴定的双无效LOX大麦植物的子代植物中寻找特异突变时就是这种情况。

一旦鉴定出在LOX-1基因中包含特定突变且在LOX-2基因中包含特定突变(例如上述任意突变)的双无效LOX大麦植物，即可以通过传统的育种方法，例如通过本领域技术人员熟知的那些方法产生具有相同突变的其它大麦植物。例如，所述双无效LOX大麦植物可以与另一个大麦栽培品种回交。

在选择LOX-1和LOX-2功能完全丧失的有用大麦植物后，可以任选进行一个或多个额外的筛选。例如，可以进一步繁殖所选择的突变体，并且可以检测新一代的植物是否完全丧失功能性LOX-1和LOX-2酶。

在选择有用的大麦植物后，可以对所述大麦植物进行育种，例如进行传统育种。育种方法描述在下文的“植物育种”部分。

植物产品

本发明涉及由双无效LOX大麦植物或其部分制备的，具有低T2N潜能水平的饮料或其它植物产品。

因此，本发明涉及植物产品，所述植物产品可以是包含上述大麦植物或其部分的组合物，或者由所述大麦植物或其部分制备的组合物，例如由所述大麦植物或其部分制备的植物产品。由于所述大麦植物缺乏LOX-1和LOX-2活性，所述组合物通常包含非常低水平的T2N潜能。下文描述了包含或由具有导致LOX-1活性功能完全丧失(例如功能性LOX-1酶完全丧失)的第一突变和导致LOX-2活性功能完全丧失(例如功能性LOX-2酶完全丧失)的第二突变的大麦植物的有用组合物的实例。

与以相同方式由野生型大麦植物(优选cv.Power)制备的类似组合物相比，优选所述组合物包含：

(i)小于60％、甚至更优选小于50％、还更优选小于40％，例如小于30％、优选小于20％、更优选小于10％的游离T2N；和/或

(ii)小于60％、甚至更优选小于50％、还更优选小于40％，例如小于30％、优选小于25％的T2N潜能。

根据组合物的类型，T2N的具体减少可以不同。上述T2N的减少与组合物显著相关，其中所述组合物选自麦芽、麦芽汁和老化饮料(aged beverage)组成的组。

此外，与以相同方式由WO 2005/087934中描述的大麦突变体D112制备的类似组合物相比，优选所述组合物包含：

(i)小于80％、优选小于70％、甚至更优选小于60％，例如小于50％的游离T2N；和/或

(ii)小于80％、优选小于70％、甚至更优选小于60％；例如小于50％的T2N潜能。

本发明一方面涉及具有导致LOX-1活性功能完全丧失(例如功能性LOX-1酶完全丧失)的第一突变和导致LOX-2活性功能完全丧失(例如功能性LOX-2酶完全丧失)的第二突变的大麦粒。本发明还涉及包含所述麦粒的组合物和由所述麦粒制备的组合物，以及由所述麦粒制备的植物产品。

已经有描述称通过浸泡工序(其中可以对大麦进行高温和/或乳酸处理)，可降低大麦粒中脂加氧酶的活性。这种处理可具有其它的不利作用，例如降低期望的酶活性，例如植酸酶活性。此外，这种处理仅从进行热处理的时间点开始降低脂加氧酶活性，因此其不影响脂加氧酶产物在此前的积累。

因此，在一个实施方式中，用于制备本发明的植物产品的方法不在至少70℃的温度下浸泡大麦粒。还优选用于制备本发明的植物产品的方法不在至少57℃的温度下在乳酸存在下浸泡大麦粒。

一方面，本发明涉及通过发芽(malting)由双无效LOX麦粒制备的麦芽组合物。术语“发芽”应该理解为浸泡的大麦粒在受控制的环境条件下发生的萌芽(例如图3的步骤2和3所例示的)。

与以相同方式由野生型大麦植物(优选cv.Power)制备的麦芽组合物相比，所述麦芽组合物优选包含小于30％，更优选小于20％，甚至更优选小于10％的游离T2N。更优选地，与以相同方式由WO 2005/087934中描述的LOX-1无效大麦突变体D112制备的麦芽组合物相比，所述麦芽组合物包含小于60％，更优选小于50％的游离T2N。还优选与以相同方式由野生型大麦植物(优选cv.Power)制备的麦芽组合物相比，所述麦芽组合物包含小于60％，优选小于50％，更优选小于40％，甚至更优选小于30％，更优选小于20％，甚至更优选小于10％的T2N潜能。更优选地，与以相同方式由WO2005/087934中描述的LOX-1无效大麦突变体D112制备的麦芽组合物相比，所述麦芽组合物包含小于60％，更优选50％的T2N潜能。麦粒发芽是受控的浸泡和萌芽，随后对大麦谷粒进行干燥，优选烘干(kiln drying)大麦谷粒的过程。在干燥前，浸泡和萌芽的大麦谷粒被称为“绿色麦芽”，其也可以代表本发明的植物产品。这一作业顺序对于引起谷粒改变的许多酶的合成都很重要，而谷粒改变是主要解聚死胚乳细胞的细胞壁以动员麦粒营养和激活其它解聚酶的过程。在随后的干燥过程中，由于化学褐色氧化反应而产生风味和颜色。虽然麦芽的主要用途用于饮料生产，但是也可将其用在其它工业工艺中，例如作为烘烤业的酶源，或者作为食品工业的调味剂和着色剂，例如麦芽或麦芽粉，或间接作为麦芽糖浆等。

一方面，本发明涉及产生所述麦芽组合物的方法。所述方法优选包括以下步骤：

(i)提供双无效LOX大麦粒；

(ii)浸泡所述麦粒；

(iii)在预定的条件下使浸泡的麦粒萌芽；

(iv)干燥所述萌芽的麦粒；

从而产生LOX-1活性和LOX-2活性完全丧失的麦芽组合物。例如可以由Briggs等人(1981)和Hough等人(1982)描述的任意方法产生所述麦芽。然而，本发明还可以使用适合产生麦芽的任何其它方法，例如用于产生特色麦芽的方法，包括但不限于焙烧(roasting)麦芽的方法。非限制实例描述在实施例6和8中。

可以通过，例如碾磨，对麦芽进行进一步加工。因此，本发明的植物产品可以是任何种类的麦芽，例如未加工的麦芽，或者经碾磨的麦芽，或者其粉末。经碾磨的麦芽和其粉末包含麦芽的化学成分，和缺乏再萌芽能力的死细胞。

另一方面，本发明的植物产品可以包含糖浆，例如大麦糖浆或大麦麦芽糖浆，乃至由其组成。所述植物产品还可以是大麦或麦芽的提取物。

另一方面，本发明涉及植物产品的类型，其是由源自双无效LOX麦粒的麦芽组合物制备的麦芽汁组合物。所述麦芽可以仅由双无效LOX麦粒制备或由还包含其它麦粒的混合物制备。本发明还涉及利用(单独或混合有其它成分)的双无效LOX大麦或其部分制备的麦芽汁组合物。

与以相同方式由野生型大麦植物(优选cv.Power)制备的麦芽汁组合物相比，所述麦芽汁组合物优选包含小于30％，更优选小于20％，甚至更优选小于10％的游离T2N。更优选地，与以相同方式由WO 2005/087934中描述的大麦突变体D112制备的麦芽汁组合物相比，所述麦芽汁组合物包含小于60％，更优选小于50％的游离T2N。还优选与以相同方式由野生型大麦植物(优选cv.Power)制备的麦芽汁组合物相比，所述麦芽汁组合物优选包含小于40％，更优选小于30％，甚至更优选小于25％的T2N潜能。更优选地，与以相同方式由WO 2005/087934中描述的大麦突变体D112制备的麦芽汁组合物相比，所述麦芽汁组合物包含小于60％，更优选小于50％的T2N潜能。

所述麦芽汁可以为第一麦芽汁、和/或第二麦芽汁、和/或进一步的麦芽汁。所述麦芽汁组合物可以为甜麦芽汁、煮沸麦芽汁或其混合物。所述麦芽汁组合物还可以是大麦麦芽汁。麦芽汁组合物通常包含高含量的氨基氮和可发酵的碳水化合物，后者主要是麦芽糖。在图3中，步骤4-6例示了由麦芽制备麦芽汁的通用方法。通常，通过合并并温育麦芽汁和水，即糖化工艺制备麦芽汁。在糖化过程中，可以向所述麦芽/液体组合物补充额外的富含碳水化合物的辅助组分，例如经碾磨的麦芽、玉米或水稻辅料。未发芽的谷类辅料通常含有非常少或者不含活性酶，这使得补充麦芽或外源酶以提供糖转化所必需的酶至关重要。

通常，通过碾磨麦芽从而使水可以在糖化阶段进入谷类颗粒，由此启动麦芽汁生产。所述糖化基本上是发芽过程的延续，并且伴有底物的酶分解。在糖化过程中，碾磨麦芽与液体部分，例如水一起温育。温育温度通常保持恒定(恒温糖化)或者逐渐升高。在任何一种情况下，在发芽和糖化中产生的可溶物质均被释放至所述液体部分中。随后的过滤将麦芽汁和残留的固体颗粒分离，后者还被称为“用过的谷粒”。所述麦芽汁还可以被称为“第一麦芽汁”。在喷射提取和过滤后，可以获得“第二麦芽汁”。通过重复所述方法可以制备进一步的麦芽汁。Briggs等人(见上文)和Hough等人(见上文)描述了适合制备麦芽汁的方法的非限制性实例。

已经描述了通过酶的热处理可以降低脂加氧酶活性。已经描述了可以对麦芽汁进行热处理以降低脂加氧酶活性和/或在高温下进行糖化。然而，除了降低脂加氧酶活性外，热处理还具有其它不利影响，例如降低其它酶活性。此外，热处理仅从进行热处理的时间点开始降低脂加氧酶活性，因此不影响脂加氧酶产物在此前的积累。

因此，在一个实施方式中，利用以下方法制备本发明的麦芽汁，其中初始糖化温度不超过70℃，优选不超过69℃，因此，例如初始糖化温度可以在50-69℃的范围，例如在55-69℃的范围，例如在55-65℃的范围。还优选在糖化过程中，本发明的麦芽汁没有在70℃或更高温度下持续大于25分钟，优选不大于20分钟，更优选不大于15分钟。如果糖化温度过高，将影响麦芽中的酶活性并可以降低，乃至消除期望的酶活性，从而将导致麦芽汁质量改变。

可以将第一麦芽汁、第二麦芽汁和进一步的麦芽汁合并，随后将其煮沸。未煮沸的麦芽汁，无论是纯的第一麦芽汁还是合并的麦芽汁，都被称为“甜麦芽汁”，而煮沸之后，可将其称为“煮沸的麦芽汁”。如果麦芽汁将用于生产啤酒，则通常在煮沸前加入酒花。

还可以通过将双无效LOX大麦植物或其部分(例如未发芽的双无效LOX麦粒或其部分，特别是经碾磨的未发芽双无效LOX麦粒或其部分)和一种或多种合适的酶(例如酶组合物或者酶混合组合物，如Cereflo、Ultraflo或OndeaPro(Novozymes))一起温育，而制备麦芽汁组合物。用于从由此制备的麦芽汁生产饮料的方法也可以被称为“大麦酿造”，而其麦芽汁组合物被称为“大麦麦芽汁”或“大麦酿造的”麦芽汁。还可以利用麦芽和未发芽大麦植物或其部分，或者仅利用未发芽的大麦制备麦芽汁组合物，任选在所述制备过程中加入一种或多种合适的酶，特别是淀粉酶、葡聚糖酶[优选(1-4)-和/或(1-3，1-4)-β-葡聚糖酶]，和/或木聚糖酶(例如阿拉伯木聚糖酶)，和/或蛋白酶，或者包含一种或多种上述酶的酶混合物，例如在所述制备过程中加入酶混合物Ondea Pro(Novozymes)。

在本发明实施方式的一个方面，本发明的麦芽汁组合物是大麦麦芽汁，例如煮沸的大麦麦芽汁，即通过将未发芽(并优选经过碾磨)的双无效LOX麦粒和水一起温育来制备的麦芽汁，优选通过糖化和喷射提取制备的麦芽汁。这种大麦麦芽汁的特征在于T2N和T2N潜能的水平极低。因此，与以相同方式由野生型大麦植物(优选cv.Power)制备的大麦麦芽汁组合物相比，所述大麦麦芽汁优选包含小于50％，更优选小于40％，甚至更优选小于30％的游离T2N。更优选地，与以相同方式由WO 2005/087934中描述的大麦突变体D112制备的麦芽汁组合物相比，所述麦芽汁组合物包含小于70％，更优选小于60％的游离T2N。此外，当所述麦芽汁被调整至13-16°p的范围，优选14-15°p的范围，更优选至14.5°p时，优选所述大麦麦芽汁包含最多0.15ppb游离T2N。此外还优选与以相同方式由野生型大麦植物(优选cv.Power)制备的大麦麦芽汁组合物相比，所述大麦麦芽汁优选包含小于50％，更优选小于40％，甚至更优选小于30％的T2N潜能。还优选与以相同方式由野生型大麦植物(优选cv.Power)制备的大麦麦芽汁组合物相比，所述大麦麦芽汁优选包含小于50％，更优选小于40％，甚至更优选小于30％的T2N前体。

本发明还涉及植物产品，其可以是包含双无效LOX大麦植物或其部分的食物组合物、饲料组合物以及香料组合物(fragrance raw materialcomposition)。食物组合物可以是，例如但不限于发芽或未发芽的大麦粒、大麦粗粉、面包、粥、包含大麦的谷类混合物、保健品如包含大麦的饮料、大麦糖浆，以及薄片状、碾碎的或挤出的大麦组合物。饲料组合物包括例如，包含大麦粒和/或粗粉的组合物。下文将对香料组合物进行描述。

本发明还涉及本发明组合物的混合物。例如，本发明一方面涉及通过以下物质的混合物制备的组合物：

(i)包含大麦植物或其部分的组合物，其中所述大麦植物或其部分包含导致LOX-1活性功能完全丧失(例如功能性LOX-1酶完全丧失)的第一突变和导致LOX-2活性功能完全丧失(例如功能性LOX-2酶完全丧失)的第二突变；和

(ii)由双无效LOX麦粒制备的麦芽组合物。

在优选的方面，本发明涉及饮料，更优选涉及麦芽饮料，甚至更优选涉及发酵饮料，例如发酵麦芽饮料，优选醇饮料，例如具有稳定的感官品质的啤酒，其中所述饮料是使用双无效LOX大麦或其部分制备的。由此，在本发明的一个优选的实施方式中，优选通过发酵双无效LOX大麦或其部分或其提取物，例如通过发酵来自双无效LOX麦芽的麦芽汁(单独或与其它成分组合)而制备所述饮料。

然而，在本发明的其它实施方式中，所述饮料为未发酵的饮料，例如麦芽汁，优选由双无效LOX麦芽制备的麦芽汁。所述饮料可以由未发芽大麦植物或其部分制备，这也包括在本发明中。

所述饮料可以是无醇饮料，例如无醇啤酒或其它种类的无醇饮料，例如无醇麦芽饮料，例如无酒精麦芽饮料(maltina)。

然而，优选所述饮料由用双无效LOX大麦粒制备的麦芽组合物制备。更优选地，所述饮料是啤酒，其可以是本领域技术人员已知的任何种类的啤酒。在一个实施方式中，所述啤酒是，例如储藏啤酒。优选使用包含萌芽的双无效LOX大麦的麦芽组合物酿造啤酒，更优选所述啤酒是利用仅由萌芽的双无效LOX大麦制备的麦芽组合物酿造的。然而，所述麦芽组合物还可以包含其它成分，例如其它萌芽或未萌芽的谷类，例如野生型大麦、LOX-1无效大麦、小麦和/或黑麦，或者包含糖的未萌芽原料或源自发芽或未发芽原料的组合物，包括糖浆组合物。然而，优选地，用于制备所述啤酒的所有大麦，例如所有发芽和/或未发芽的大麦和/或萌芽和/或未萌芽大麦优选是双无效LOX大麦。

在优选的实施方式中，本发明的饮料是优选地通过发芽和任选喷射提取而由用烘干麦芽制备的麦芽汁生产的啤酒。这种啤酒在本文中也被称作“发芽的”。然而，本发明的饮料还可以由大麦麦芽汁制备。这种啤酒还被称为“大麦啤酒”。

在优选的实施方式中，与以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的饮料的T2N潜能相比，本发明的饮料包含小于50％，优选小于40％，更优选小于35％，例如小于30％的T2N潜能。还优选与以相同方式由LOX-1无效大麦突变体(优选WO 2005/087934中描述的大麦突变体D112)制备的饮料相比，本发明的饮料包含小于70％，优选小于60％，例如小于50％的T2N潜能。还优选，如果饮料所基于的原始提取物的°p被调整至10-12°p的范围，更优选11°p，则本发明的饮料包含最多2ppb，更优选最多1.5ppb，例如最多1ppb的T2N潜能。

在优选的实施方式中，与以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的饮料的T2N前体相比，本发明的饮料包含小于50％，优选小于40％，更优选小于35％，例如小于30％的T2N前体。还优选与以相同方式由WO2005/087934中描述的大麦突变体D112制备的饮料相比，本发明的饮料包含小于70％，优选小于60％，例如小于50％的T2N前体。还优选，如果饮料所基于的原始提取物中的°p被调整至10-12°p的范围，更优选11°p，则本发明的饮料包含最多2ppb，更优选最多1.5ppb，例如最多1ppb的T2N前体。

在本发明的一个具体的实施方式中，所述饮料为大麦啤酒，与以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的大麦啤酒的T2N潜能相比，其包含小于50％，优选小于40％，更优选小于35％的T2N潜能。在该实施方式中，还优选与以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的大麦啤酒的T2N前体相比，所述大麦啤酒包含小于50％，优选小于40％，更优选小于35％的T2N前体。在该实施方式中，还优选本发明的大麦啤酒包含最多2ppb，更优选最多1.5ppb，甚至更优选最多1.2ppb T2N潜能。在该实施方式中，还优选，如果饮料所基于的原始提取物中的°p被调整至10-12°p的范围，更优选11°p，则本发明的大麦啤酒包含最多2ppb，更优选最多1.5ppb，甚至更优选最多1.2ppb T2N前体。

在本发明的另一个具体的实施方式中，所述饮料是由麦芽制备的啤酒，其中与以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的啤酒的T2N潜能相比，所述啤酒包含小于50％，优选小于40％，更优选小于30％的T2N潜能。在该实施方式中，还优选与以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的啤酒的T2N前体相比，所述啤酒包含小于50％，优选小于40％，更优选小于30％的T2N前体。在该实施方式中，还优选本发明的啤酒包含最多2ppb，更优选最多1.5ppb，甚至更优选最多1ppb T2N潜能。在该实施方式中，还优选，如果饮料所基于的原始提取物中的°p被调整至10-12°p的范围，更优选11°p，则本发明的啤酒包含最多2ppb，更优选最多1.5ppb，甚至更优选最多1ppb T2N前体。

“感官品质”表示吸引人嗅觉和味觉的性质。通过例如经过培训的专家品尝小组对这些品质进行分析。优选地，所述品尝小组经过专门培训以识别醛异味，例如T2N。通常，所述品尝小组由3-30位成员组成，例如5-15位，优选8-12位成员组成。所述品尝小组可以评价各种风味的存在，例如纸样、氧化、老化和面包样(bready)异味。与本发明有关，优选特别降低了纸样和/或老化异味。测定饮料的“感官品质”的方法描述在国际专利申请WO2005/087934的实施例6中。测定饮料的“感官品质”的另一个优选方法描述在下文的实施例8和9中。在优选的实施方式中，稳定的感官品质至少部分是低水平的T2N或T2N潜能的结果。

优选地，本发明的饮料的特征在于，与以相同方式由包含LOX-1和LOX-2活性的大麦植物制备的类似饮料相比，在15-25℃的范围，例如约20℃储藏至少10个月后的纸样味道较低。优选地，通过经过培训的品尝小组评价，所述纸样味道小于90％，更优选小于80％，例如小于70％。

还优选与由野生型大麦制备的类似饮料相比，本发明的饮料在提高的温度下储藏后的纸样味道较低。当如上文所述，由受过培训的专家品尝小组确定“纸样味道”性质并以0-5分(0为无，5为极大)等级进行评分时，优选本发明的饮料具有一个或多个，优选至少两个，例如至少三个，例如以下所有对纸味道的分值：

(i)在37℃温育1周后，纸样分值比以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的饮料的纸样味道分值低至少0.5，优选低至少0.7，更优选低至少1.0；

(ii)在37℃温育2周后，纸样分值比以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的饮料的纸样味道分值低至少0.5，优选低至少0.7，更优选低至少1.0；

(iii)在37℃温育3周后，纸样分值比以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的饮料的纸样味道分值低至少0.5，优选低至少0.7，例如低至少1.0；

(iv)在37℃温育1周后，纸样分值是以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的饮料的纸样味道分值的最多90％，优选最多80％，更优选最多70％；甚至更优选最多60％，还更优选最多50％；

(v)在37℃温育2周后，纸样分值是以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的饮料的纸样味道分值的最多90％，优选最多80％，更优选最多70％；甚至更优选最多60％；

(vi)在37℃温育3周后，纸样分值是以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的饮料的纸样味道分值的最多90％，优选最多80％。

当饮料甚至在储藏后也包含非常低水平的T2N时，所述饮料被称为具有“稳定的感官品质”。因此，本发明的目的是提供利用双无效LOX大麦植物制造的饮料(例如具有稳定的感官品质的啤酒)。在储藏至少1周，优选至少2周，更优选至少3周，甚至更优选至少4周，例如1-3个月，例如3-6个月，例如6-12个月，例如大于1年后，与以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的饮料相比，这种饮料优选包含非常低水平的T2N潜能，优选小于50％，优选小于40％，更优选小于35％，例如小于30％，如小于20％，例如小于10％的T2N潜能。

此外，还优选在30-40℃的范围，优选37℃的温度下储藏至少1周，优选至少2周，更优选至少3周，甚至更优选至少4周后，例如在20-30℃的温度范围下储藏1-3个月，例如3-6个月，例如6-12个月，例如大于1年后，与以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的饮料相比，本发明的饮料包含非常低水平的T2N，优选小于50％，优选小于40％，更优选小于35％，甚至更优选小于30％，例如小于25％的游离T2N。

特别地，优选在37℃储藏2周后，与以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的饮料相比，优选本发明的饮料包含非常低水平的T2N，优选小于50％，优选小于40％，更优选小于35％的游离T2N。还优选在37℃储藏2周后，本发明的饮料包含小于50ppt，甚至更优选小于40ppt，甚至更优选小于30ppt游离T2N。优选地，所述储藏在存在的亚硫酸盐水平不超过10ppm的情况下进行，优选1-10ppm范围的亚硫酸盐水平，更优选1-8ppm范围的亚硫酸盐水平，更优选2-6ppm范围的亚硫酸盐水平，还更优选3-5ppm范围的亚硫酸盐水平，例如4ppm亚硫酸盐。

还优选在37℃存在2周后，与以相同方式由LOX-1无效大麦(优选WO2005/087934中描述的大麦突变体D112)制备的饮料相比，本发明的饮料包含小于80％，优选小于75％，例如小于60％的游离T2N。优选地，所述储藏在存在的亚硫酸盐水平不超过10ppm的情况下进行，优选1-10ppm范围的亚硫酸盐水平，更优选1-8ppm范围的亚硫酸盐水平，更优选2-6ppm范围的亚硫酸盐水平，还更优选2-4ppm范围的亚硫酸盐水平。

还特别优选在37℃储藏8周后，与以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的饮料相比，本发明的饮料(例如啤酒，例如大麦啤酒)包含非常低水平的T2N，优选小于50％，优选小于40％，更优选小于35％，甚至更优选小于30％，还更优选小于25％的游离T2N。还优选在37℃储藏8周后，所述饮料(例如啤酒，例如大麦啤酒)包含最多50ppt，甚至更优选最多40ppt，还更优选最多30ppt，甚至更优选最多20ppt游离T2N。优选地，所述储藏在存在的亚硫酸盐水平不超过10ppm的情况下进行，优选1-10ppm范围的亚硫酸盐水平，更优选1-8ppm范围的亚硫酸盐水平，更优选1-6ppm范围的亚硫酸盐水平，还更优选2-4ppm范围的亚硫酸盐水平，例如3ppm亚硫酸盐。

还优选在37℃储藏8周后，与以相同方式由LOX-1无效大麦(优选WO2005/087934中描述的大麦突变体D112)制备的饮料相比，本发明的饮料包含小于70％，优选小于60％，甚至更优选小于55％的游离T2N。优选地，所述储藏在存在的亚硫酸盐水平不超过10ppm的情况下进行，优选1-10ppm范围的亚硫酸盐水平，更优选1-8ppm范围的亚硫酸盐水平，更优选2-6ppm范围的亚硫酸盐水平，还更优选2-4ppm范围的亚硫酸盐水平。

此外，本发明的目的还在于提供利用双无效LOX大麦植物制造的饮料(例如啤酒)，其在30-40℃的范围，优选37℃的温度下储藏至少1周，优选至少2周，更优选至少3周，甚至更优选至少4周后，例如在20-30℃的温度下储藏1-3个月，例如3-6个月，例如6-12个月，例如大于1年后，与以相同方式由WO 2005/087934中描述的大麦突变体D112制备的饮料相比，所述饮料包含小于70％，优选小于60％，例如小于50％的T2N和/或T2N潜能，更优选小于70％，优选小于60％，例如小于50％的游离T2N。

特别地，优选在37℃储藏8周后，与以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的饮料相比，本发明的饮料(例如啤酒，如大麦啤酒)包含非常低水平的T2N，优选小于70％，优选小于60％，更优选小于55％，甚至更优选小于52％的游离T2N。优选地，所述储藏在存在的亚硫酸盐水平不超过10ppm的情况下进行，优选1-10ppm范围的亚硫酸盐水平，更优选1-8ppm范围的亚硫酸盐水平，更优选1-6ppm范围的亚硫酸盐水平，还更优选2-4ppm范围的亚硫酸盐水平，例如3ppm亚硫酸盐。

优选地，本发明的饮料还包含1-10ppm(百万分之一份数)亚硫酸盐，更优选2-8ppm，更优选3-7ppm，还更优选4-6ppm范围的亚硫酸盐。在15-40℃，优选30-37℃，更优选37℃的温度下储藏至少1周，优选至少2周，更优选至少3周，甚至更优选至少4周，例如1-3个月，例如3-6个月，例如6-12个月，例如大于1年后，本发明的饮料优选包含最多0.07，优选最多0.06，更优选最多0.05，甚至更优选最多0.04，例如最多0.03ppb(十亿分之一份数)游离T2N。在本发明的一个优选实施方式中，在存在4-6ppm亚硫酸盐的情况下，在37℃储藏4周后本发明的饮料包含最多0.03ppb，优选最多0.025ppb，更优选最多0.02ppb(十亿分之一份数)游离T2N。

与以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的类似饮料相比，本发明的具有稳定感官品质的饮料优选包含非常低水平的T2N潜能，优选小于40％，更优选小于30％，甚至更优选小于25％的T2N潜能。

在一个实施方式中，本发明涉及具有低水平的某些三羟基十八碳烯酸(也被称为THA)的饮料(例如啤酒)，特别是具有低9，12，13-THA和9，10，13-THA水平的饮料。THA的特征在于苦味(Baur and Grosch，1977；Baur等人，1977)，并且因此被认为是不期望的。

因此，期望9，12，13-THA和9，10，13-THA水平尽可能低，优选低于1.3ppm，例如低于1ppm。然而，源自麦芽的饮料(例如啤酒)中9，12，13-THA和9，10，13-THA的总浓度还依赖于用于制备所述特定饮料的麦芽量。因此，通常高浓度啤酒将包含比淡啤酒多的9，12，13-THA和9，10，13-THA，从而使高浓度啤酒中能接受整体水平更高的9，12，13-THA和9，10，13-THA。因此，与以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的饮料相比，优选本发明的饮料包含较低水平的9，12，13-THA和9，10，13-THA。特别地，与以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的饮料中的水平相比，本发明的饮料中9，12，13THA的水平优选最多为50％，优选最多为40％，更优选最多为30％。还优选与以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的饮料中的水平相比，本发明的饮料中9，10，13THA的水平优选最多为70％，优选最多为60％。可通过使用双无效LOX大麦制备此类饮料。

在本发明的一个实施方式中，所述饮料具有改良的泡沫性质。当所述饮料是啤酒时，这具有特别重大的意义。因此，本发明的目的是提供具有优异泡沫性质的饮料，例如啤酒。优选地，与以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)制备的饮料相比，本发明的啤酒在60-80分钟内多产生至少多出10％，优选至少多出20％，还更优选至少多出25％的泡沫。按照下文实施例9的描述测定所述泡沫的产生。

本发明还涉及生产所述饮料的方法。所述方法优选包括以下步骤：

(i)提供包含萌芽的双无效LOX麦粒的麦芽组合物；

(ii)将所述麦芽组合物加工成饮料；

由此获得感官品质更稳定的饮料。

在一个优选的实施方式中，所述饮料是啤酒。在这种情况下，所述加工步骤优选包括例如通过上文描述的任何方法由所述麦芽组合物制备麦芽汁，并发酵所述麦芽汁。

一般来说，可以用发芽和/或未发芽的大麦谷粒制造醇饮料，例如啤酒。除了酒花和酵母外，麦芽也促成了啤酒的风味和颜色。此外，麦芽还充当了可发酵糖和酶的来源。啤酒生产的一般工艺的示意图示于图3，而适合发芽和酿酒的方法的实例详细描述可见于，例如Briggs等人(1981)和Hough等人(1982)的文献。可获得多种用于分析大麦、麦芽和啤酒产物的定时更新的方法，所述方法包括，例如但不限于American Association of Cereal Chemists(1995)，American Society of Brewing Chemists(1992)，European BreweryConvention(1998)和Institute of Brewing(1997)。已经认识到特定的酿酒厂使用了许多带有显著差异的具体工序，这些差异与当地消费者的喜好有关。本发明可以使用任何此类制造啤酒的方法。非限制实例描述在实施例8和9中。

可以通过例如上文描述的任何方法获取上述饮料，例如啤酒、麦芽饮料或非发酵麦芽汁的麦芽组合物。可以按照上文描述由所述麦芽组合物制备麦芽汁。

从麦芽汁生产啤酒的第一步优选包括煮沸所述麦芽汁。在煮沸期间，可以添加其它组分，例如产生典型的苦啤酒和芳香啤酒特征的酒花。煮沸麦芽汁还会导致主要在后续的麦芽汁冷却阶段沉淀的多酚和变性蛋白质之间的聚集。冷却后，麦芽汁被转移到含酵母的发酵罐中。优选地，所述酵母是啤酒酵母，卡尔酵母(Saccharomyces carlsbergensis)。可以将麦芽汁发酵任何适当时间，通常在1-100天的范围。在持续数天的发酵过程中，糖被转化成醇和CO₂，同时伴随产生一些风味物质。

随后可以对啤酒进行进一步加工，例如冷藏啤酒。也可以过滤和/或储藏啤酒，储藏是产生令人愉快的芳香以及较少酵母(yeasty)味的过程。也可以加入添加剂。此外，还可以加入CO₂。最后可以在封装(例如装瓶或装罐)前，对啤酒进行巴氏灭菌和/或过滤。

除了在啤酒生产领域的进展，这还将有益于降低啤酒中的T2N和T2N潜能。因此，还需要使成品啤酒具有较少异味的新原料，特别是大麦和麦芽。因此，本发明的目的是提供此类大麦植物和麦芽。

有很多方法都可用于确定大麦植物产品或植物产品是否由LOX-1和LOX-2基因具有引起功能性LOX-1酶完全丧失和功能性LOX-2酶完全丧失的突变的大麦植物制备。植物产品通常会包含至少一些来自用于生产该植物产品的植物的基因组DNA。因此，麦芽将包含大量的基因组DNA，但即便是大麦或麦芽提取物(例如麦芽汁)也可以包含来自所述大麦或麦芽的基因组DNA或其片段。此外，基于大麦的饮料，例如啤酒也可包含来自所述植物的基因组DNA或其片段。通过分析植物产品中的DNA，可以确定用于制备植物产品的植物的LOX-1和LOX-2基因是否具有引起功能性LOX-1酶完全丧失和功能性LOX-2酶完全丧失的突变。所述突变可以是，例如上文在“LOX活性功能的丧失”部分描述的LOX-1和LOX-2基因的任何突变。可以通过任何可用的方法，例如通过测序或者通过基于扩增的方法(包括基于PCR的方法)分析所述基因组DNA。如果认为LOX-1基因和/或LOX-2基因具有特定突变，则可以采用多态性分析，例如SNP分析。可以按照下文实施例10的描述进行此类分析。本领域技术人员能够对这些实施例中描述的具体SNP分析进行适应性改进以用于其它突变或者其它起始材料。

如果上述植物产品仅由LOX-1和LOX-2基因具有引起功能性LOX-1酶完全丧失和功能性LOX-2酶完全丧失的突变的大麦植物制备，则大麦LOX-1mRNA和LOX-2 mRNA和/或LOX-1蛋白和LOX-2蛋白的存在与否也可以作为表明所述植物产品是否由双无效LOX大麦制备的指标。因此，可以利用Western印迹分析，或者其它蛋白分析，或者利用RT-PCR，或者利用Northern印迹分析，或者利用其它mRNA分析完成植物产品的产品检测。当所述植物产品为麦芽时，此类分析特别有用。

化学诱变

为了产生本发明的双无效LOX大麦植物，即包含导致功能性LOX-1酶完全丧失的第一突变和导致功能性LOX-2酶完全丧失的第二突变的植物，可以通过任何合适的诱变方法，例如通过使用大麦粒的化学诱变制备非常大量的大麦突变体。已知该方法随机引入突变。可以利用任何化学诱变物质进行大麦的诱变。然而，优选利用NaN₃处理谷粒，使存活的谷粒萌芽，然后分析子代植物。由诱变的谷粒长成的植物世代(称为M0)包含任何给定突变的杂合嵌合体。在自花传粉之后收集的子代植物称为M1代，在M1代中，给定突变分离至相应的杂合子和纯合子中(参见图1)。

利用NaN₃处理麦粒不等同于处理单个细胞，原因是处理之后的谷粒可包含一些未突变的细胞和多种具有DNA突变的细胞。由于在不产生种系的细胞谱系中的突变会丢失，因此，目标就是将诱变剂靶向发育为生殖组织的少数细胞，这有助于M1代的产生。

为了评价整体突变效率，可计数M0和M1代中的白化(albino)嵌合体和白化植物。由作为存活植物的函数的计分突变体数量(scoring mutant number)得出对突变效率的估计，而作为已处理种子的函数的计分突变体数量测定了突变效率和谷粒死亡二者的组合。

值得注意的是，在基因表达的几乎每个步骤，细胞都具有可缓和损害突变影响的质量保证机制。真核生物中的一个经过深入研究的实例是无义介导的mRNA降解(称为NMD)，其阻止合成潜在有害的提前截短蛋白(Maquat andCarmichael，2001；Wu等人，2007)。在NMD中，通过末位密码子相对于下游脱稳定元件的位置将其鉴定为翻译提前终止密码子。产生翻译提前终止(无义)密码子(PTC)的突变有时提高了选择性剪接转录本的水平，由此跳过有害突变，从而潜在地挽救了蛋白的功能(Mendell and Dietz，2001)。

植物育种

在一个实施方式中，本发明的目的是提供包含双无效LOX特征的在农业上有用的大麦植物。农作物发育常为始于引入新特征的长期且困难的过程。然而，从植物育种家的观点看，这一步骤几乎总是产生与现在的市场品种相比，农业性状总体谱图不甚理想的植物。

除了双无效LOX特性之外，在产生商业发芽大麦品种的领域还要考虑其它因素，例如麦粒产量、大小以及与发芽性能或酿造性能相关的其它参数。因为已经显示许多(即便不是所有)相关特性都处于遗传控制之下，本发明还提供了现代的纯合且高产量的发芽栽培品种，其可以通过与本申请公开的双无效LOX大麦植物杂交而制备。这种大麦植物的麦粒提供了产生T2N潜能的能力低的新原料，即与以相同方式由WO 2005/087934中描述的大麦无效LOX-1突变体D112产生的麦芽相比，由这种麦粒产生的麦芽优选具有小于50％的T2N潜能。专业大麦育种者将能够选择并开发大麦植物，该大麦植物在与双无效LOX大麦杂交后将产生更好的栽培品种。或者，大麦育种者可以利用本发明的植物用于进一步的诱变，以产生源自双无效LOX大麦的新栽培品种。

确保在子代中维持双无效LOX特征的一个方法涉及LOX-1基因和LOX-2基因的SNP分析。优选地，还对LOX-1和LOX-2活性进行测定。

可以将本发明的大麦植物引入到任何合适的育种方案中。

本发明的另一个目的是提供包含双无效LOX特征的在农艺上优良的大麦植物。因此，本发明还涉及通过使第一亲本大麦植物与第二亲本大麦植物杂交而产生新的双无效LOX大麦植物的方法，其中所述第一植物或第二植物是双无效LOX大麦。此外，第一亲本大麦植物和第二亲本大麦植物均可来自双无效LOX大麦品种。因此，利用双无效LOX大麦品种的任何此类方法都是本发明的一部分：自花授粉、回交和群体杂交等。利用双无效LOX大麦品种作为亲本产生的所有植物都在本发明的范围内，包括由源自双无效LOX大麦品种的品种形成的那些植物。在将外源DNA引入至双无效LOX植物或植物组织并在其中表达的情况下，双无效LOX大麦还可以用于遗传转化。

本发明可以使用回交方法以将突变大麦植物的双无效LOX特征引入至另一个栽培品种中，例如都是当代高产发芽大麦栽培品种的cv.Scarlett或cv.Jersey中。在标准的回交操作中，将原始目标品种(即轮回亲本植物)与携带有待转移目标突变LOX基因的第二品种(非轮回亲本植物)杂交。随后，将这次杂交产生的双无效LOX子代植物与轮回亲本杂交，重复这一过程直至获得这样的大麦植物，即其中除了非轮回亲本植物的双无效LOX特征外，轮回亲本特有几乎所有特征都在所产生的植物中被恢复。最后，将最后产生的回交植物自交以产生纯的双无效LOX育种子代植物。

加快植物育种过程的方法包括通过应用组织培养和再生技术对所产生的突变体进行初始增殖。因此，本发明另一个方面提供了生长和分化后产生具有双无效LOX特征的大麦植物的细胞。例如，育种可以包括传统杂交、制备源自可育花药的植物或利用小孢子培养。

LOX通路产物

在多种实施方式中，本发明涉及包含低水平的T2N潜能的大麦植物和其产品。LOX酶催化带有顺式-1，顺式-4戊二烯系统的多不饱和脂肪酸的二加氧作用。在大麦中，C₁₈多不饱和脂肪酸亚油酸(18:2^Δ9，12)和α-亚麻酸(18:3^{Δ9，12，15})是主要的LOX底物。通过在酰基链的C-9位(多由LOX-1催化)或C-13位(多由LOX-2催化)加入分子氧而启动脂肪酸代谢的脂加氧酶通路，产生相应的9-HPODE和13-HPODE[当底物为α-亚麻酸时产物是9-氢过氧化十八碳三烯酸和13-氢过氧化十八碳三烯酸(HPOTE)，但HPOTE不发挥T2N前体的功能]。在LOX通路的氢过氧化物裂解酶支路中，9-HPODE和13-HPODE可以被裂解成短链含氧酸和醛(参见图2)。特别地，9-HPODE可以被裂解成被转化成T2N的顺式-壬烯醛，而13-HPODE是2-E-己烯醛的前体。因此，预期作为LOX-2催化的亚油酸的二加氧作用的主要产物13-HPODE不是导致形成陈旧味T2N的通路的上游成分。

认为本发明涵盖了影响LOX-1和LOX-2催化作用的下游代谢物的产生，其不作为LOX-1或LOX-2催化反应的直接产物而产生，但是随后的系列反应的结果。这些反应包括自然发生的、因素诱导的或者酶催化的异构化和转化。因此，可能通过调节该通路中其它成分(例如氢过氧化物裂解酶HPL)的表达而影响这些下游代谢物的产生。

T2N潜能

本发明的重要目的是降低或消除T2N潜能。因此，本发明的目的是减少T2N前体和醛加合物的形成。虽然与啤酒老化有关的数个化学反应仍不清楚，由T2N潜能产生游离T2N被认为是啤酒产品中形成陈旧风味的主要原因(Kuroda等人，见上文)。因此，本发明的目的是提供具有低水平的T2N潜能的饮料和具有低水平的T2N前体的饮料。

多数T2N潜能由麦芽汁转移至成品啤酒，在成品啤酒中可以释放出游离T2N(Liégeois等人，2002)，并且酸度和温度都是该过程中的重要因素。根据本发明，T2N潜能的定义如上文在定义部分中的描述。也可以使用其它测定T2N潜能的水平的方法。为了避免混淆，在本申请中“T2N潜能”的含义如上文在定义部分中的描述。具有释放T2N或者转化成T2N的能力的化学物质在本文中被称为“T2N前体”，并且通过除测定T2N潜能的方法外的其它方法确定或测定的T2N前体被称为“T2N前体”。特别可以通过首先处理样本从而使具有释放T2N或转化成T2N能力的基本上所有(优选所有)或其化学物质都实际上确实分别释放T2N和/或转化成T2N。此后，测定T2N的水平。

本发明的大麦粒不含LOX-1和LOX-2活性。有趣地，这种大麦粒包含非常少的T2N潜能。

因此，利用双无效LOX大麦粒产生的啤酒将不仅具有非常低水平的T2N，还具有非常低水平的T2N潜能。双无效LOX大麦粒在本发明的范围内，其中所述双无效LOX大麦粒其产生的啤酒产品包含非常低水平的T2N潜能，优选为以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)生产的类似啤酒产品的T2N潜能的水平的小于40％，更优选小于30％，甚至更优选小于25％。因此，所述啤酒产品包含的T2N潜能为以相同方式由WO 2005/087934中描述的大麦突变体D112生产的类似啤酒产品的T2N潜能的小于60％，更优选小于50％。

并且，还优选源自双无效LOX大麦粒的植物产品具有非常低的T2N前体水平。由双无效LOX大麦粒制备的植物产品在本发明的范围内，其中所述植物产品包含的T2N前体的水平为以相同方式由野生型大麦(优选cv.Power)生产的类似植物产品的T2N前体的水平的小于40％，更优选小于30％，甚至更优选小于25％。因此，所述植物产品包含的T2N前体为以相同方式由WO 2005/087934中描述的大麦突变体D112生产的类似植物产品的T2N前体的小于60％，更优选小于50％。

注意到在微发芽原料的样本中或在来自发芽原料的产品中测定的T2N值常高于来自较大规模生产的原材料，例如30-kg规模的实验性发芽样本。然而，大规模和小规模试验之间，T2N潜能相对试验值通常是相似的。

类似地，还注意到在微发芽原料的样本中和在来自发芽原料的产品中测定的T2N潜能(和T2N前体)常常高于来自较大规模生产的原材料，例如30-kg规模的实验性发芽样本。然而，大规模和小规模试验之间，T2N潜能相对试验值通常是相似的。

实施例

本文的实施例例示说明了本发明的优选实施方式，并且不应认为这些实施例是对本发明的限制。

除非另有说明，否则用于操作核酸和细菌的基本分子生物学技术均按照Sambrook and Russel(2001)中的描述进行。

实施例1

在突变的LOX-1无效群(M3代)的突变的成熟胚中选择低LOX-2活性

LOX-1和LOX-2两者均在成熟的大麦胚(LOX-1是主要的酶)中合成，也在萌芽胚(两个酶水平相等)中合成。为了测定数千样本中的LOX活性，利用大麦胚的提取物的试验将是最便利的。并且在用于LOX-2水平的试验中，筛选诱变的LOX-1无效大麦的麦粒将非常有利(参见WO 2005/087934)

从无效LOX-1突变体D112(描述在WO2005/087934中，ATCC的保藏号是PTA-5487)的大麦植物收集麦粒，并与诱变剂NaN₃温育以在大麦基因组DNA中诱导点突变。按照Kleinhofs等人(见上文)提供的建议进行试验设定。

接着，在田间土地繁殖M1代的突变谷粒经历随后两代，最后产生用于筛选目的的高比例的M3代纯合植物(过程概述参见图1)。预期M3代的突变谷粒含基因突变的频率为0.9-2.3/10,000个谷粒(Kleinhofs等人，参见上文)。

通过常规的LOX-1实验测定，发现无效LOX-1突变体的成熟胚中LOX-2活性低。在此，同时将反应混合物的储备溶液和提取物合并(按照WO2005/087934中的描述)。在该申请中详述了提高实验灵敏度的方法，其中同时改变了酶提取条件以及反应混合物储备溶液的混合。

对于LOX提取，本发明人惊喜地发现利用100-mM乳酸缓冲液(pH 4.5)致使HPODE-消耗活性的背景水平显著降低，使HPODE积累在试验缓冲液中。此外，本发明人还发现，通过在加入剩余试验反应物之前，允许所形成的小部分HPODE通过对与LOX-2结合的铁原子的Fe⁺⁺→Fe⁺⁺⁺氧化而活化LOX-2，最终形成蓝色吲达胺染料，可进一步改良所述试验。

简而言之，利用200μl提取缓冲液(100mM乳酸，pH 4.5)从所分离的成熟胚中提取LOX-2酶。提取在96孔板中进行，其中每1.2-ml孔含圆形的5-mm玻璃珠。将平板在冰上孵育10分钟，然后转移至MM 300试验室磨(Retsch)，经电子调整而以27sec^-1的频率震荡35秒。随后，将平板在Allegra 6R离心机(Beckman-Coulter)中以4,000rpm在4℃离心10分钟以沉淀不溶物质，并随后至进一步加工前保持在冰上最多2小时。将96孔板转移至Biomek 2000Laboratory Automation Workstation(Beckman-Coulter)以进一步吹吸。最初，将96×40μl胚提取物转移至标准的96-孔微孔平板(Nunc)，随后加入90μl试剂A[12.5mM 3-(二甲基氨基)苯甲酸，0.625mM亚油酸]，其中所述试剂A通过首先混合155μl亚油酸(相当于134mg游离酸，Sigma，L-1376)和257μl吐温-20，然后加入H₂O至体积为5ml，随后加入600μl 1M NaOH而制成。利用H₂O将澄清的溶液调整至20ml。在加入90μl试剂B(0.25mM 3-甲基-2-苯并噻唑啉酮腙，0.125mg/ml血红蛋白)前温育混合物10分钟。在进一步温育5分钟后，利用Flourostar Galaxy分光光度计(BMG Labtechnologies)测定96孔平板各孔的A₅₉₅，颜色形成反映存在由LOX-2催化的二加氧作用产生的HPODE(因此，活性表示为A₅₉₅单位)。

利用以上描述的方法，分析总共21,000个大麦突变系的LOX-2活性，并基于低LOX-2活性选择其中的1,550个突变系。将这些突变系进一步在田间繁殖，随后在成熟谷粒中测定LOX-2活性。然而，发现没有一个突变系将低LOX-2特征转移至下一代。

实施例2

在萌芽大麦胚中选择低LOX-2活性

改良的筛选材料根据Kleinhofs等人(参见上文)提供的详述，将从通过杂交(无效LOX-1突变体D112×Jersey)×Sebastian产生的LOX-1无效系Ca211901的大麦植物收集的麦粒与诱变剂NaN₃一起温育。选择该方法的原因是已知其在大麦基因组DNA中诱导点突变，最终导致诱变DNA编码的蛋白的氨基酸残基取代或截短。在本申请的诱变试验中，选择在田间土地繁殖M1代的突变谷粒经历随后两代，最后产生用于筛选目的的高比例纯合植物(参见图1)。尽管没有筛选M2代谷粒，主要原因是预期这些谷粒包含有相对高比例的杂合点突变，但使用M3代的突变谷粒作为筛选材料，其中预期每10,000个谷粒具有0.9-2.3个突变(Kleinhofs等人，参见上文)。

意外地，本发明人发现，与分析成熟胚的提取物(如上文实施例1所述)相比，萌芽胚的分析产生试验结果明显改进。因此，建立高通量筛选方法以测定包括子叶盘组织在内的萌芽胚中的LOX-2活性。

从35,125个大麦穗的成熟麦粒分离两个胚(无效LOX-1突变体D112的M4代的20,977个系，和LOX-1无效系Ca21190系的M3代的14,148个系)，并转移至96孔储藏板(ABgene)。在向各个孔中加入20μl水后开始胚萌芽，其中用湿的Kimnett薄纸和塑料盖覆盖所述孔。将平板在塑料箱中于20℃温育48小时。温育后，提取LOX-2酶；首先向各孔中加入5-mm玻璃珠和200μl提取缓冲液(100mM乳酸缓冲液，pH 4.5)，然后在MM 300实验室磨(Retsch)中以27sec^-1的频率研磨35秒。随后，将平板在Allegra 6R离心机(Beckman-Coulter)中在4℃以4,000rpm离心10分钟，以沉淀不溶物质。基本按照用于成熟胚提取物的LOX-2活性分析(实施例1)的描述测定LOX-2活性，区别仅在于每个试验仅使用30μl提取物而非40μl。

潜在突变体的鉴定如上文所述，分析上述35,125个大麦系的各两个谷粒的LOX-2活性，目的在于鉴定当与LOX-1无效和野生型谷粒相比时，所述活性高度降低的谷粒。在Ca211901系的M3代中，共鉴定出7个潜在原始突变体。在温室中进一步繁殖这些突变体，收获，并再选择与非常低的LOX活性相关的特征。最后，Ca211901系的仅一个突变体(命名为突变体A689，在本文中还被称为双无效LOX突变体A689)显示基本没有LOX-2活性。利用LOX活性几乎完全由LOX-2产生的萌芽胚的提取物进行总LOX活性的详细测定(Schmitt and van Mechelen，1997)。对于突变体A689的M3谷粒的萌芽胚，由LOX比色试验测定的总LOX活性(实施例1，表1)为0.163±5.5％A₅₉₅U/萌芽胚，而对于LOX-1无效母本品种Ca211901则为1.224±3.8％A₅₉₅U/萌芽胚(无效LOX-1原始突变体D112的相应值为1.215±6.0％A₅₉₅U/萌芽胚)。

实施例3

大麦突变体A689

进行分析以确定M4和M5代的LOX-2无效植物在相应的突变表型方面是否为纯合的。这种类型的分析会有助于确定所述突变在遗传上是隐性的，还是显性的。因此，如果M3代植物对于显性突变是杂合的，则随后世代的个体将出现表型分离。

测定突变体A689的M3、M4和M5代的大麦胚中的总LOX活性，并将活性与母本系Ca211901的胚的进行比较，还与无效LOX-1突变体D112的进行比较。LOX活性的测定如按照本申请实施例1的描述。在所有试验中，对照样本均包括来自母本系的萌芽胚的标准提取物，和来自无效LOX-1突变系Ca211901和突变体D112的胚的热失活标准提取物。对于突变体A689的M4代谷粒的胚，平均总LOX活性为0.151±2.6％A₅₉₅U(n＝24)，并且对于突变体A689的M5代的萌芽胚的平均总LOX活性为0.16±2.3％A₅₉₅U(n＝90)。出于比较，LOX-1无效系Ca211901和突变体D112的萌芽胚分别产生1.210±3.0％A₅₉₅U(n＝90，M4代)和1.199±4.6％A₅₉₅U(n＝90，M5代)。结果总结在表1和图4A-C中。总之，试验数据证明突变体D112的M4和M5代谷粒在表明非常低的总LOX活性的遗传特征方面是纯合的，其反映了双无效LOX表型。

表1.由原始突变体(M3代)和子代(M4和M5代)的萌芽大麦胚制备的提取物中的总LOX活性(平均)。

实施例4

基于HPLC分析萌芽和微发芽大麦中的HPODE

除了利用萌芽胚代替成熟胚外，基本照常国际专利申请WO 2005/087934的描述进行大麦HPODE的分析。按照实施例2的描述，使M4代谷粒萌芽48小时。基本按照下文实施例6的描述，使M5代的谷粒进行微发芽过程，但在萌芽72小时后测定具体HPODE的水平，并且省略烘干过程。通过使来自M4和M5代突变体A689和对照样本的萌芽胚的粗蛋白提取物与底物亚油酸一起温育而测定9-HPODE和13-HPODE的水平。通过HPLC分析反应产物。

利用解剖刀在子叶盘和胚乳之间切割，从而从大麦谷粒分离萌芽胚。然后将规模为4个胚的每个样本置于两张称重纸之间，并轻柔地锤打以产生均质粉末。将该粉末转移至1.5ml的微离心试管中，加入600μl 200-mM乳酸缓冲液(pH 4.5)，并在利用塑料槌(Kontes)进一步匀质化前，将试管在冰上保持10分钟。随后，向各试管中加入600μl H₂O，并将样本以20.000×g离心2分钟。将所得上清的100-μl试样转移至15ml离心管(Cellstar；目录号188271)中，以准备分析LOX作用后的反应产物。含260μM亚油酸的2ml的100-mM Na-磷酸盐缓冲液(pH 6.5，该底物是通过将10ml的100-mM Na-磷酸盐缓冲液(pH6.5)与100μl 24-mM亚油酸储备溶液混合而制得，其中的亚油酸储备溶液通过以下而制得：首先混合155μl亚油酸(对应于134mg游离酸；L-1376，Sigma)和257μl吐温-20，然后加入H₂O至体积为5ml，随后加入600μl 1M NaOH，当溶液变澄清时，用H₂O调整体积至20ml)。在采血管旋转仪上以～30rpm温育15分钟后，加入2ml乙酸乙酯，并通过剧烈振荡5秒混合样本内容物以提取9-HPODE和13-HPODE。然后将样本以800×g离心10分钟，将1ml乙酸乙酯转移至1.5ml微离心管中，其中在氮气流下蒸发乙酸乙酯。随后，使HPODE重悬在300μl甲醇中，并过滤通过0.45-μm膜(Millex-HN filter，Millipore)。通过HPLC进行HPODE含量分析。将来自各样本的总共15μl注射至装配有4.6×250mmSymmetry C18柱(Waters)的HPLC设备(HP 1100 Series，Hewlett Packard)中。使用的流动相为16∶12∶12∶10∶0.5(v∶v∶v∶v∶v)的水∶甲醇∶乙腈∶四氢呋喃∶三氟乙酸混合物。流动相的流速为1ml/分钟，并且在柱前测定的压力为140巴。分离在30℃下进行。在234nm测定具有共轭双键的亚油酸氢过氧化物。

在图5中显示了所得HPODE谱的比较。包含9-HPODE和13-HPODE的混合物的标准样本的色谱图示于图5A中。由无效LOX突变体D112的M4代的48小时萌芽谷粒制备的提取物的色谱图(图5B)与双无效LOX突变体A689的色谱图(图5C)的比较显示了从无效LOX-1突变体D112的萌芽胚提取的LOX形成的显著的13-HPODE，而在双无效LOX突变体A689的提取物中却没有观察到或仅观察到极少的9-HPODE和13-HPODE。

当分析野生型cv.Barke(图6A)、无效LOX-1突变体D112(图6B)和双无效LOX突变体A689(图6C)的72小时微发芽胚时，观察到类似特征。在野生型cv.Barke的成熟胚的提取物中同样形成了显著水平的9-HPODE和13-HPODE两者(图6A)。无效LOX-1突变体D112胚的提取物形成非常少量的9-HPODE，但形成了大量的13-HPODE(图6B)，因此证明LOX-1活性的丧失。双无效LOX突变体A689的胚提取物同样没有形成显著水平的9-HPODE和13-HPODE(图6C)，证实了完全不存在LOX-1和LOX-2两种活性。

实施例5

大麦双无效LOX突变体A689、其LOX-1无效母本品种Ca211901和无效LOX-1突变体D112的性质

温室中的植物繁殖使双无效LOX突变体A689和其母本系Ca211901的M4和M5代谷粒在温室萌芽，并在12℃和65％相对湿度下以光照20小时的每日循环生长。Ca211901系和双无效LOX突变体A689植物在株高、每株的分蘖数、开始开花和每穗的谷粒数方面的生长特征类似，这强调说明了突变体A689的谷粒发育和生长生理学类似于野生型。

突变体A689在田间条件下的农艺学性能在标准的田间试验中比较双无效LOX突变体A689和无效LOX-1突变体D112的植物以及Ca211901系的植物，目的在于鉴定在株高、抽穗期、抗病性、倒伏、穗破损、成熟时间和产量方面可能的差异(参见表2)。因此，将等量的上述麦粒播种在一个地点7.88-m²的小块土地上，每种包含两个重复。在整个生长季节中仔细观察农艺学性质，同样着重于上述性质。对于所测试的任何植物在农艺学特征方面都没有观察到差异。

表2.农艺性能的比较

^*0-9的等级，其中0代表没有感染或倒伏，9代表极度感染或倒伏。

^**与cv.Barke(无效LOX-1突变体D112的母本品种)相比的相对产量性能。

实施例6

微麦芽及其麦芽汁的分析

利用大麦突变体A689和D112以及cv.Barke和cv.Power的100g样本进行微发芽。在田间将所述突变系繁殖数个季节以获得足以用于发芽和酿造试验的谷粒材料。

浸泡条件是：在16℃的浸泡水中，润湿8小时；干燥14小时；润湿8小时；干燥10小时；润湿4小时。

发芽条件是18℃12小时；16℃24小时；14℃24小时；12℃60小时。烘干条件是60℃12小时；68℃3小时；74℃4小时；80℃3小时。对最后形成的麦芽进行T2N测定。

此外，通过标准的EBC法，分析突变体A689和D112的大麦和麦芽样本以及cv.Barke和cv.Power的大麦和麦芽样本(参见表3)。

麦芽汁制备为了与cv.Power比较测定突变体A689和D112的性质，生产25-225g，的麦芽样本并用在实验室糖化系统中，所述糖化系统包含外部搅拌器和装配有能够以指定方式改变温度的自动调温器的水浴。糖化以小规模进行，通过滤纸分离最后形成的醪液以获得甜麦芽汁。利用加热罩和与回流冷却器相连的圆底烧瓶进行实验室规模的麦芽汁煮沸。

对甜麦芽汁和煮沸麦芽汁二者进行T2N测定(参见图7-9)。对于源自双无效LOX突变体A689的M5代谷粒的样本，观察到T2N水平显著降低～75％(三个A689突变系的平均值)。此外，还发现由微发芽样本产生的麦芽汁中游离T2N和T2N前体两个水平的显著降低(参见图8-9)。

基本按照Groenqvist等人(1993)的描述，在利用O-(2，3，4，5，6-五氟苄基)羟基胺对羰基衍生化后，通过具有质谱检测的气相色谱(GC-MS)测定T2N的水平。

表3.微发芽分析

^*通过标准的近红外透射光谱测定。

^**利用Megazyme试剂盒(产品编号K-BETA)测定β-淀粉酶活性。

^***利用Megazyme试剂盒(产品编号K-CERA)测定α-淀粉酶活性。

实施例7

由双无效LOX突变体A689的麦芽生产的啤酒中的THA

啤酒特异性的THA很可能源于亚油酸(Drost等人，1974)。数个报道已经证明，啤酒中THA的总含量为5.7-11.4μg/ml(Hamberg，1991；和该文件中的参考文件)。9，12，13-THA通常构成啤酒中THA的75-85％，而9，10，13-THA通常仅构成15-25％的THA。还发现痕量的其它异构体。

在由双无效LOX大麦突变体A689的麦芽制备的麦芽汁产生的啤酒(参见实施例8，不同之处在于使用60℃的糖化温度)中，与由cv.Power的麦芽制备的对照啤酒相比，9，12，13-THA的浓度降低75％；且与LOX-1无效原始突变体D112相比，降低45％(表4)。对于9，10，13-THA异构体，也观察到类似差异。利用标准的HPLC质谱分析进行这些测定(Hamberg，参见上文)

表4.由cv.Power、无效LOX-1突变体D112和双无效LOX突变体A689的麦芽产生的啤酒中的THA(3次测量的平均值)。

实施例8

实验性发芽和酿造

发芽利用双无效LOX突变体A689、无效LOX-1突变体D112和cv.Power的麦粒(所有情况均为2007年收获)进行所述试验。按照下述在麦芽室中进行30-kg规模的发芽：

(i)在16℃浸泡：润湿8小时；干燥14小时；润湿8小时；干燥10小时；润湿4小时；

(ii)发芽：18℃12小时；16℃24小时；14℃24小时；12℃60小时；

(iii)干燥：60℃12小时；68℃3小时；74℃4小时；80℃3小时。

大麦和麦芽的性质列于表5。结果的观察表明样本满足酿造用原材料的麦芽规格。

表5.试验数据

^*通过标准的近红外透射光谱测定。

^**利用Megazyme试剂盒(产品编号K-BETA)测定β-淀粉酶活性。

^***利用Megazyme试剂盒(产品编号K-CERA)测定α-淀粉酶活性。

利用麦芽进行实验性酿造初始的200-1试验(其主要结果示于图10A、B)包括以下步骤：

(i)麦芽汁制备；

(ii)麦芽汁分离；

(iii)麦芽汁煮沸；

(iv)发酵；

(v)储藏；

(vi)清啤酒过滤；和

(vii)装瓶。

利用野生型cv.Power、无效LOX-1突变体D112和双无效LOX的30kg规模麦芽样本制备麦芽汁。初始糖化(marshing-in)在48℃持续20分钟，然后加热18分钟(其中温度从48℃升高至67℃)。糖化在67℃停止30分钟，然后为在72℃持续5分钟的加热步骤，并且在78℃结束糖化(mashing-off)前静止15分钟。上文所指的酿造步骤，即麦芽汁煮沸和过滤、涡旋分离、发酵、储藏和包装在绿色玻璃瓶中，符合用于标准酿造实践的规范。

利用与实施例6所述相同的试验设定测定所制成的啤酒的T2N前体(图10)。此大规模试验的结果显示的T2N前体相对水平的趋势与微发芽麦粒的煮沸麦芽汁中相同(比较图9和10)，同样显示无效LOX-1突变体D112和双无效LOX突变体A876两者与cv.Power相比的显著较低的值。更具体地，当与野生型cv.Power麦芽的啤酒相比时，无效LOX-1和双无效LOX的啤酒样本中的T2N前体分别降低了～40％和～70％。

此外，在上述实验性酿造啤酒中测定了游离T2N的水平，同样显示出与观察到的T2N潜能相同的趋势，即由无效LOX-1和双无效LOX麦芽制备的啤酒的T2N显著低于用cv.Power的麦芽酿造的啤酒。因此，同样证明双无效LOX麦芽的啤酒在T2N水平方面优于LOX-1无效的啤酒。

另一个单独目的是确定利用双无效LOX原料以200升规模生产啤酒时，这些啤酒在强制老化后是否具有优异的品尝性质。因此，要求实施例9所述的啤酒品尝专家小组利用0(无)至5(极大)的分值评估实验性酿造的正常啤酒在37℃强制老化1周后的纸样异味味道。发现当cv.Power的啤酒产生的纸样分值为1.6时，LOX-1无效和双无效LOX的啤酒的纸样分值分别为1.2和0.6。该结果证实了双无效LOX原料用于生产风味稳定的啤酒的优越性。

实施例9

正常啤酒和大麦酿造啤酒的比较

将未发芽的双无效LOX突变体A689、LOX-1无效大麦突变体D112和野生型cv.Power的麦粒应用于相同的大麦酿造工艺，其中均使用25kg碾磨的未发芽大麦作为生产200l啤酒的原料(出于比较目的，在平行进行的试验中使用30kg经碾磨的麦芽用以生产200l正常啤酒)。目的不仅是比较麦芽汁、来自大麦的啤酒和源自麦芽的酿造物的性质，还在于确定上述突变体是否在大麦酿造的和正常成品啤酒两者中均产生改良的异味性质。200-1规模的酿造试验包含与上文实施例8中所列相同的生产步骤，具体细节描述在下文。

利用大麦进行糖化和酿造在本实验中，在根据厂商提供的建议(即每801H₂O含87.5g酶混合物)在初始糖化时加入的酶混合物Ondea Pro(Novozymes；批号NFNG0005)存在下制备麦芽汁。糖化条件为：在54℃初始糖化30分钟；加热10分钟以将温度提高至64℃；在64℃温育45分钟；加热至78℃持续13分钟；在78℃停止10分钟。所述酿造步骤(麦芽汁过滤和煮沸、涡旋分离、发酵、储藏和包装在绿色玻璃瓶中)符合用于标准酿造实践的规范。

标准发芽、糖化和酿造发芽利用双无效LOX突变体A689、无效LOX-1突变体D112和野生型cv.Power的麦粒(均来自2009年的收获)。在16℃的浸泡温育时间为：湿润8小时；干燥14小时；湿润8小时；干燥10小时；湿润4小时。发芽条件为：18℃12小时；16℃24小时；14℃24小时；12℃60小时。烘干条件为：60℃12小时；68℃3小时；74℃4小时；80℃3小时。根据标准的EBC方法进行上述原料的大麦和麦芽分析，结果列在表6。认为所有麦芽均适合酿酒。

糖化条件为：在48℃初始温育20分钟；加热至67℃，18分钟；在67℃温育30分钟；然后加热至72℃持续5分钟；在72℃温育15分钟；加热至78℃持续6分钟；在78℃温育5分钟结束。所述酿造步骤(麦芽汁过滤和煮沸、涡旋分离、发酵、储藏和包装在绿色玻璃瓶中)符合用于标准酿造实践的规范。

煮沸麦芽汁的分析-游离T2N基本按照Groenqvist等人(1993)，也可参见实施例5，在C18柱上固相提取并用O-(2，3，4，5，6-五氟苄基)羟基胺对羰基衍生化后，通过气相色谱和质谱(GC-MS)检测测定提取物中的T2N水平。

在cv.Power和无效LOX-1突变体D112的样本的直接比较中，观察到在由双无效LOX突变体A689的大麦酿造的和正常的麦芽生产的煮沸麦芽汁中游离T2N均显著降低(图11)。与由无效LOX-1突变体D112生产的大麦酿造的煮沸麦芽汁相比，双无效LOX突变体A689生产的大麦酿造的煮沸麦芽汁显示游离T2N水平降低～45％(对于相应的发芽样本，降低～15％)。

类似地，观察到与cv.Power的啤酒中游离T2N相比，在双无效LOX突变体A689的啤酒中游离T2N降低～72％(对与相应的发芽样本，降低～45％)。

煮沸麦芽汁的分析-T2N前体基本按照Groenqvist等人(参见上文)的描述，在用O-(2，3，4，5，6-五氟苄基)羟基胺对羰基衍生化后，通过GC-MS测定cv.Power、无效LOX-1突变体D112和双无效突变体A689的煮沸的大麦酿造麦芽汁和正常麦芽汁样本中的T2N前体。

如图12所示，煮沸的大麦酿造麦芽汁和正常麦芽汁的T2N前体在来自双无效LOX突变体A689的样本中明显是最低的，与野生型cv.Power的相比降低～70％(还记录了与来自无效LOX突变体D112的样本相比的降低)。

仅大麦酿造的啤酒的分析-游离T2N、强制老化分析源自大麦酿造的麦芽汁样本的发酵并包含类似水平的亚硫酸盐的瓶装啤酒在一个月内随时间产生的T2N。

按照上文的描述使上述大麦酿造啤酒在37℃强制老化以形成游离T2N。

如图13A所例示，根据T2N形成动力学的显著差异的结果，可以容易地区分三种类型的大麦酿造啤酒。当cv.Power大麦的对照啤酒的表现与所预期相同(在37℃8周后64ppt T2N，T2N水平比基于麦芽的类似啤酒高10-20％(未显示))的同时，在源自双无效LOX突变体A689的大麦啤酒中观察到意外且显著低的T2N形成(在37℃8周后16ppt T2N)，相当于最终啤酒中的游离T2N降低75％。无效LOX-1突变体D112的大麦酿造啤酒中，8周后游离T2N比野生型麦粒的相同类型的啤酒相比少52％。

强制老化试验强调了所分析的啤酒之间的显著差异。在1.5周后，cv.Power的大麦酿造对照啤酒的T2N水平超过～50ppt的品尝阈值水平，而双无效LOX突变体689的T2N水平稳定在～16ppt，因此远好于无效LOX-1突变体D112的大麦酿造啤酒的32ppt T2N。

大麦酿造啤酒和正常啤酒的比较-T2N前体在图13B中提供了表明均以大麦酿造原材料和发芽原材料生产的200升体积的新鲜啤酒中的T2N前体水平的数据概述。双无效LOX原料在所测定的性质方面同样较好，实际上大麦酿造的啤酒中的T2N潜能(1.2ppb)比用LOX-1无效麦芽产生的啤酒的T2N潜能(1.5ppb)低。

大麦酿造啤酒和正常啤酒的比较-强制形成的T2N在37℃强制老化的情况下，由野生型原材料和突变体原材料制备的啤酒之间也具有显著差异(图13C)。野生型cv.Barke麦粒的大麦酿造啤酒和正常啤酒在2周后均显示～50ppt T2N，无效LOX-1突变体D112和双无效LOX突变体A876的原材料的相应值分别降低～50％和～75％。在强制老化三周后观察到同样的趋势。因此，证实在啤酒生产中使用LOX酶具有缺陷的原材料代表了显著降低老化过程中T2N的形成的优选途径。并且，在此方面，双无效LOX突变体A876的原材料也优于无效LOX-1突变体D112的原料。

大麦酿造啤酒和正常啤酒的比较-THA在过去的数十年已经对由亚油酸衍生的啤酒特异性THA进行了描述(Drost等人，1974)。自此，多个报道都已经证明，啤酒中THA的总量在～5-12ppm的范围(Hamberg，1991；和其中的参考文献)。9，12，13-THA通常构成啤酒中THA的75-85％，而9，10，13-THA占THA的15-25％，还发现痕量的其它异构体。

在利用无效LOX-1突变体D112和双无效LOX突变体A689的原料的200升规模试验的新鲜大麦酿造啤酒中，发现与cv.Power对照相比，源自LOX-1和LOX-2通路的9，12，13-THA和9，10，13-THA的水平分别降低～60％和～80％(图14A)。在无效LOX-1突变体D112的大麦酿造啤酒中测出意外高水平的9，10，13-THA(来自LOX通路的LOX-2分支的主要THA产物)，即与cv.Power的啤酒的相比为+47％。此结果与用双无效LOX突变体A689获得的结果相反，同样与cv.Power相比，利用双无效LOX突变体A689获得的所述结果降低了60％。独立试验的结果证明了上述结论。所述观察结果的分子基础仍不清楚，但推测可能是某些细胞机制被激活，从而通过增强参与9，10，13-THA形成的酶的合成而弥补突变体D112中缺失的LOX-1。

出于该原因，由双无效LOX突变体A689产生的大麦酿造啤酒产生显著低于cv.Power的9，12，13-THA∶9，10，13-THA比例。

9，12，13-THA和9，10，13-THA水平的测定以及其比例的测定代表了用以显示啤酒是否为利用双无效LOX突变体A689的大麦生产的便利的初级工具。然而，更严格的评价方法可包括如本申请所描述的其他检测。

在由双无效LOX突变体A689产生的啤酒中，发现源自LOX通路的9，12，13-THA和9，10，13-THA的浓度与发芽cv.Power的对照啤酒相比分别降低～75％和～40％(图14B)。在所述啤酒中，还可以计算出与cv.Power的啤酒相比非常低的9，12，13:THA∶9，10，13-THA比例。通常(但非所有情况下)，基于麦芽的啤酒中的THA水平略低于大麦酿造的啤酒(比较图14A和B)。

单独的大麦酿造啤酒分析-味道和风味稳定性风味专家小组评价了cv.Power、无效LOX-1突变体D112和双无效LOX突变体A689的上述强制老化的大麦酿造啤酒。

大体上，品尝小组发现所有类型的新鲜和在37℃下持续1周后的强制老化啤酒都具有令人满意的风味谱。然而，对照啤酒的“纸样”味道分值显著高于利用双无效LOX突变体A689和无效LOX-1突变体D112产生的啤酒(图15A)，即对照啤酒的特征在于所述异味的味道较重。通常，品尝小组优选由突变体A689的双无效LOX大麦产生的大麦酿造啤酒。

受过培训的品尝小组还评价了啤酒在30℃储藏1个月和3个月后较一般的“老化”味道，同样证明cv.Power和LOX-1无效的啤酒的所述风味分值显著高于双无效大麦突变体A689(图15B)。

总之，双无效LOX突变体689的大麦酿造啤酒和正常啤酒的风味稳定性的改善是显著的，简要的原因在于在储藏后，特别是高温储藏后的低T2N水平。因此，LOX-1和LOX-2在酿造背景中的作用提供了老化啤酒中的主要异味化合物T2N产生的决定性作用。

大麦酿造啤酒和正常啤酒的比较-啤酒泡沫在150ml啤酒中加入50ml H₂O前，将大麦酿造啤酒和对照啤酒在超声浴中脱气20分钟。将混合物缓慢倒入由16-cm长、7-cm宽的玻璃管组成的泡沫塔中(在底部和顶部分别带有玻璃滤器和连接器)。将N₂气以400ml min^-1流速从底部鼓动通过所述混合物以产生啤酒泡沫，将其引导通过试管，并收集到置于秤(weight)上的分级沉淀锥中。

对于大麦酿造的啤酒(图16A)和麦芽酿造的啤酒(图16B)两者均以5分钟的时间间隔记录泡沫总重直至停止泡沫形成。在任一种情况下，来自双无效LOX突变体A689的原材料的啤酒均产生最多泡沫。实际上，大麦酿造的啤酒中的泡沫形成优于基于麦芽的相应啤酒。

表6.大麦、麦芽、麦芽汁和啤酒分析

^*通过标准的近红外透射光谱测定。

^**利用Megazyme试剂盒(产品编号K-BETA)测定β-淀粉酶活性。

^***利用Megazyme试剂盒(产品编号K-CERA)测定α-淀粉酶活性。

基本按照Groenqvist等人(1993)的描述测定。

实施例10

大麦突变体A689中的LOX-2基因是突变的

按照下文的描述获得编码cv.Barke的LOX-2的基因组核苷酸序列(SEQID NO：1)和双无效LOX突变体A689的LOX-2的基因组核苷酸序列(SEQ IDNO：2)。随后比较所获得的序列，以确定突变体A689的LOX-2无效基因型的分子基础，其中突变体A689的表型特征在于在萌芽大麦谷粒中没有LOX-2活性。

出于所述比较目的，利用植物DNA提取试剂盒(Roche)从秧苗的子叶分离突变体A689和野生型cv.Barke的大麦基因组DNA。利用引物5′-CGCAGCGAGCTAACTTAGAAGCGTGCCACA-3′(SEQ ID NO：3)和5′-CCTCATGCCTTTGTGCTATCCTTGCTTGCT-3′(SEQ ID NO：4)通过PCR扩增覆盖突变体A689和cv.Barke的基因组DNA中的LOX-2的蛋白编码区的两个3331-bp的序列，引物序列的基础包含LOX-2基因的基因组序列(即SEQ IDNO：1)。

PCR反应由重悬在含5pmol各引物和3.0U FailSafe聚合酶(Epicentre)的20μl反应缓冲液中的100ng基因组DNA组成。利用以下参数在MJ循环仪中进行PCR扩增：98℃30秒1个循环；98℃15秒、65℃30秒、72℃60秒共30个循环；72℃10分钟1个循环。将所产生的PCR产物在1％的琼脂糖凝胶上分离，利用Qiaex II凝胶提取试剂盒(Qiagen)纯化长度与扩增子对应的DNA片段，并插入到质粒载体pCR Blunt II TOPO Blunt(Invitrogen)中。将所述编码序列应用至利用特定寡核苷酸引物的二脱氧核苷酸链式终止反应，然后在MegaBACE1000DNA测序仪(GE Biosystems)上进行序列测定。在图17中显示了跨越LOX-2编码区的起始密码子和终止密码子的基因组序列的示意图。利用Lasergene序列分析软件包第5.2版(DNASTAR)进行序列比较，表明在外显子6中的SEQ ID NO：2的第2689位以G→A取代形式的一个点突变(图17)。

LOX-2的野生型序列编码长度为864个残基的蛋白(SEQ ID NO：5)，预测的质量为96.7kDa。而突变体D112在LOX-1编码序列中第684位的突变引起提前终止密码子的引入，突变体A689的LOX-2编码序列中的突变导致180个氨基酸的C末端截短，因此编码76.8-kDa蛋白(SEQ ID NO：6)。

表7提供了与野生型大麦、LOX-1无效大麦突变体D112(描述在WO2005/087934中)和大麦突变体A689(双无效LOX)的LOX-2基因有关的分子差异的总结。

表7.野生型和突变大麦的分子数据

^*突变体A689的母本系Ca211901显示相同的性质。

^**根据WO 2005/087934的SEQ ID NO：1的LOX-1基因的序列编号，和根据本申请的SEQ ID NO：1的LOX-2基因的序列编号。

^***预测的蛋白的氨基酸长度(aa)，和括号内预测的相应质量。

实施例11

大麦双无效LOX突变体A689的遗传检测

单核苷酸多态性(SNP)试验代表了用以鉴定植物突变体的常规方式。SNP在此表示在一个位点将有至少两个不同核苷酸的突变点。所述试验基于利用基因组DNA作为模板的两组PCR反应的组合应用。两个反应均包含位点特异性引物和两个SNP引物之一(每个等位基因序列各一个)。每个植物系进行两组PCR反应，PCR反应的结果为SNP引物结合至突变体的序列或者结合至野生型等位基因(图18A)。在数个方法中的一个方法中，SNP分析可基于评价在PCR产物的凝胶电泳后的条带图而鉴定突变系。

根据厂商的建议，使用植物DNA提取试剂盒(Roche)从秧苗的叶组织分离来自大麦育种系和野生型cv.Quench的大麦基因组DNA。用以扩增野生型LOX-2基因的SNP的寡核苷酸引物为5′-ACCTCAAGGACGCGGCGTGG-3′(SEQ ID NO：7)和5′-GAGCGAGGAGTACGCGGAG-3′(SEQ ID NO：8)，而用于相应突变基因的引物为5′-ACCTCAAGGACGCGGCGTGA-3′(SEQ ID NO：9)和5′-GAGCGAGGAGTACGCGGAG-3′(SEQ ID NO：8)。在PCR反应中使用这些引物组合，以扩增分别包含双无效LOX突变体A689和cv.Quench的LOX-2部分编码区的200bp的DNA片段(图18A)。PCR反应物由在含25pmol引物和7μl REDTaq混合物(Sigma)的20μl反应缓冲液中的100ng基因组DNA组成，根据厂商的说明使用。在MJ循环仪中进行29个循环的PCR扩增：96℃2分钟1个循环；95℃1分钟；68℃1分钟；72℃1分钟；72℃延伸10分钟结束。

具有LOX-1突变的纯合大麦植物和具有LOX-2突变的纯合植物之间的交互授粉可导致4个不同的事件。利用至少两组引物：用于鉴定LOX-1突变(LOX-1基因在第3474位的G→A突变)的一个SNP引物对FL820(SEQ IDNO：10和FL823(SEQ ID NO：11)和用于鉴定LOX-2突变(LOX-2基因(SEQ IDNO：1)在第2689位的G→A突变)的一个SNP引物对FL1034(SEQ ID NO：9)和FL1039(SEQ ID NO：8)，应该可能鉴定四个上述杂交事件之一(列于图18B)。换句话说，可以利用单个组合的PCR反应产生特异于上述LOX-1和LOX-2两个突变的PCR产物。用以扩增用来检测LOX-1基因中第3474位的G→A突变的SNP PCR产物的寡核苷酸引物为5′-CAAGGTGCGGTTGCTGGTGTC-3′(SEQID NO：10)和5′-CTCGCGCGTCTCCTTCCAT-3′(SEQ ID NO：11)，产生包含LOX-1的部分编码区的166-bp DNA片段。用以扩增用来检测LOX-2基因中第2689位的G→A突变的SNP PCR产物的寡核苷酸引物为5′-ACCTCAAGGACGCGGCGTGA-3′(SEQ ID NO：9)和5′-GAGCGAGGAGTACGCGGAG-3′(SEQ ID NO：8)，产生包含LOX-2的部分编码区的200-bp DNA片段。图18C的泳道2详述了具有上述突变的双无效LOX突变体A689，然而野生型对照两者均不具有(图18C，泳道3)。

在另一个试验中，根据厂商的说明利用REDExtract-N-Amp Plant PCR试剂盒(Sigma)从23个育种系秧苗的叶组织分离大麦基因组DNA，并随后用在PCR反应中，其中上述PCR反应由在含25pmol引物的20μl反应缓冲液的100ng基因组DNA组成。根据厂商的说明在DNA Engine循环仪(MJ Research)中进行扩增：96℃2分钟1个循环；95℃1分钟；68℃1分钟；72℃1分钟共29个循环；最后72℃10分钟一个循环。图19显示了PCR产物电泳后的条带图。分析表明，所述方法可用于选择期望的无效LOX-1和无效LOX-2突变组合。

序列表

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PCT/RO/134表

关于微生物或其它生物材料保藏的说明

(PCT细则13之二)

关于微生物或其它生物材料保藏的说明

(PCT细则13之二)

Claims (54)

1.由大麦植物或其部分制备的饮料，其中所述饮料包含非常低水平的T2N潜能，并且其中所述大麦植物或其部分包含导致功能性脂加氧酶(LOX)-1酶完全丧失的第一突变和导致功能性LOX-2酶完全丧失的第二突变。

2.如权利要求1所述的饮料，其中所述饮料为麦芽饮料。

3.如权利要求1和2中任一项所述的饮料，其中所述饮料是发酵的麦芽饮料。

4.如前述任一项权利要求所述的饮料，其中所述饮料是啤酒。

5.如权利要求1和4中任一项所述的饮料，其中所述饮料是大麦啤酒。

6.如前述权利要求1-3中任一项所述的饮料，其中所述饮料是无醇麦芽饮料。

7.如前述任一项权利要求所述的饮料，其中与以相同方式由大麦cv.Power制备的饮料的T2N潜能相比，所述饮料包含小于50％，优选小于40％，更优选小于35％的T2N潜能。

8.如前述任一项权利要求所述的饮料，其中与以相同方式由LOX-1无效大麦突变体制备的饮料相比，所述饮料包含小于70％，优选小于60％的T2N潜能。

9.如前述任一项权利要求所述的饮料，其中在37℃储藏8周后，与以相同方式由大麦cv.Power制备的饮料相比，所述饮料包含小于50％，优选小于40％，更优选小于35％，甚至更优选小于30％，还更优选小于25％的游离T2N。

10.前述任一项权利要求所述的饮料，其中在存在2-4ppm亚硫酸盐的情况下在37℃储藏2周后，与以相同方式由大麦cv.Power制备的饮料相比，所述饮料包含小于50％，优选小于40％，更优选小于35％的游离T2N。

11.前述任一项权利要求所述的饮料，其中在37℃储藏8周后，与以相同方式由LOX-1无效大麦制备的饮料相比，所述饮料包含小于70％，优选小于60％，甚至更优选小于55％的游离T2N。

12.前述任一项权利要求所述的饮料，其中在37℃储藏2周后，与以相同方式由LOX-1无效大麦制备的饮料相比，所述饮料包含小于80％，优选小于75％的游离T2N。

13.前述任一项权利要求所述的饮料，其中当由受过训练的专家品尝小组进行评价并且以0-5分的等级，其中0为不存在，5为极大进行打分时，在37℃储藏2周后，所述饮料的纸样味道的分值比与以相同方式由cv.Power制备的饮料的纸样味道的分值低至少0.5，优选低至少0.7，更优选低至少1.0。

14.如权利要求9-13中任一项所述的饮料，其中所述储藏是在2-6ppm亚硫酸盐的存在下进行。

15.大麦植物或其部分，其包含导致功能性LOX-1酶完全丧失的第一突变和导致功能性LOX-2酶完全丧失的第二突变。

16.如权利要求15所述的大麦植物或其部分，其中在所述植物的所述LOX-1编码基因中包含提前终止密码子。

17.如权利要求15-16中任一项所述的大麦植物或其部分，其中所述植物的LOX-1编码基因包含位于起始密码子下游最多705个密码子，优选最多665个密码子处的提前终止密码子。

18.如权利要求16所述的大麦植物或其部分，其中所述植物的所述LOX-1编码基因包含无义密码子，所述密码子对应于WO 2005/087934的SEQID NO：2的第3572-3574位碱基。

19.如权利要求15-18中任一项所述的大麦植物或其部分，其中所述植物的所述LOX-2编码基因包含提前终止密码子。

20.如权利要求15-19中任一项所述的大麦植物或其部分，其中所述植物的所述LOX-2编码基因包含位于起始密码子下游最多707个密码子，优选最多684个密码子处的提前终止密码子。

21.如权利要求20所述的大麦植物或其部分，其中所述植物的所述LOX-2编码基因包含位于SEQ ID NO：1的第2689位核苷酸的突变，导致形成终止密码子。

22.如权利要求15-21中任一项所述的大麦植物或其部分，其中所述植物选自保藏在ATCC、保藏编号为PTA-9640且命名为″大麦，Hordeumvulgare L.：系A689″的植物及其子代植物组成的组。

23.如权利要求15-22中任一项所述的大麦植物或其部分，其中所述大麦植物的所述部分是麦粒。

24.如权利要求15-23中任一项所述的大麦植物或其部分，其中所述植物由包含以下步骤的方法生产，或者所述植物是由包含以下步骤的方法生产的植物的子代：

(i)提供LOX-1活性完全丧失的大麦植物或其部分；和

(ii)诱变所述大麦植物，和/或来自所述大麦植物的大麦细胞，和/或大麦组织，和/或大麦粒，和/或大麦胚，由此获得M0代大麦；和

(iii)将所述诱变大麦植物、麦粒和/或胚培育至少2代，由此获得Mx代的大麦植物，其中x为≥2的整数；和

(iv)获得所述Mx大麦植物的胚；和

(v)使所述胚萌芽；

(vi)测定所述萌芽胚或其部分中的LOX-1和LOX-2活性；和

(vii)选择所述萌芽胚中LOX-1活性和LOX-2活性完全丧失的植物；和

(viii)测定LOX-1编码基因和LOX-2编码基因中是否存在突变；和

(ix)选择在LOX-1编码基因和LOX-2编码基因中具有突变的植物；

由此获得在LOX-1编码基因和LOX-2编码基因中具有引起LOX-1活性完全丧失和LOX-2活性完全丧失的突变的大麦植物。

25.如权利要求1-14中任一项所述的饮料，其中所述饮料是由权利要求15-24中任一项所述的大麦植物或其部分制备的。

26.组合物，其包含权利要求15-24中任一项所述的大麦植物或其部分。

27.包含经加工的大麦植物或其部分的植物产品，其中所述大麦植物是权利要求15-24中任一项所述的大麦植物。

28.如权利要求27所述的植物产品，其中所述植物产品是包含经加工的大麦植物或其部分的麦芽组合物，其中所述大麦植物是权利要求15-24中任一项所述的大麦植物。

29.如权利要求28所述的麦芽组合物，其中所述大麦植物的所述部分是麦粒。

30.如权利要求28-29中任一项所述的麦芽组合物，其中与以相同方式由大麦突变体D112制备的麦芽组合物相比，所述麦芽组合物包含最多60％的游离T2N，所述大麦突变体D112在美国标准培养物保藏中心(ATCC)的保藏编号为PTA-5487。

31.如权利要求20-22中任一项所述的麦芽组合物，其中与以相同方式由cv.Power制备的麦芽组合物相比，所述麦芽组合物包含小于30％，更优选小于20％，甚至更优选小于10％的游离T2N。

32.如权利要求27所述的植物产品，其中所述植物产品是利用权利要求15-24中任一项所述的大麦植物或其部分制备的麦芽汁组合物，或者是利用由所述大麦植物或其部分制备的麦芽组合物制备的麦芽汁组合物，或其混合物。

33.如权利要求32所述的麦芽汁组合物，其中所述植物的所述部分是麦粒。

34.如权利要求32和33中任一项所述的麦芽汁组合物，其中所述麦芽汁组合物是大麦麦芽汁。

35.如权利要求32-34中任一项所述的麦芽汁组合物，其中与以相同方式由野生型大麦制备的麦芽汁组合物相比，所述麦芽汁组合物包含小于50％，更优选小于40％，甚至更优选小于30％的游离T2N。

36.如权利要求32-35中任一项所述的麦芽汁组合物，其中与以相同方式由野生型大麦制备的麦芽汁组合物相比，所述麦芽汁组合物包含小于50％，更优选小于40％，甚至更优选小于30％的T2N潜能。

37.如权利要求32-36中任一项所述的麦芽汁组合物，其中所述麦芽组合物是权利要求28-31中任一项所述的麦芽组合物。

38.如权利要求32-37中任一项所述的麦芽汁组合物，其中所述麦芽汁组合物是利用在不超过70℃，优选不超过69℃的温度下的糖化产生的。

39.如权利要求32-38中任一项所述的麦芽汁组合物，其中所述麦芽汁组合物是通过其中糖化过程中的温度不高于70℃，持续不超过25分钟的方法产生的。

40.如权利要求27所述的植物产品，其中所述植物产品是由以下的混合物制备的组合物：

(i)包含权利要求15-24中任一项所述的大麦植物或其部分的组合物；和

(ii)权利要求28-31中任一项所述的麦芽组合物。

41.如权利要求27所述的植物产品，其中所述植物产品是由权利要求40所述的组合物制备的麦芽汁组合物或饮料。

42.如权利要求1-14中任一项所述的饮料，其中所述饮料是由权利要求28-31中任一项所述的麦芽组合物或者权利要求32-39中任一项所述的麦芽汁组合物制备的。

43.如权利要求27所述的植物产品，其中所述植物产品选自大麦糖浆、麦芽糖浆、大麦提取物和麦芽提取物组成的组。

44.生产T2N潜能水平非常低的饮料的方法，其中所述方法包括以下步骤：

(i)制备包含权利要求15-24中任一项所述的大麦植物或其部分的组合物；和

(ii)将(i)的所述组合物加工成饮料；

由此获得T2N潜能水平非常低的饮料。

45.如权利要求44所述的方法，其中所述T2N潜能水平非常低是指该潜能是以相同方式由大麦cv.Power制备的饮料的T2N潜能的至多50％，优选至多40％，更优选至多35％。

46.如权利要求42-43中任一项所述的方法，其中T2N潜能水平非常低是指该潜能与以相同方式由LOX-1无效大麦突变体制备的饮料相比，该潜能小于70％，优选小于60％。

47.如权利要求44-46中任一项所述的方法，其中步骤(i)包括由所述大麦植物或其部分的麦粒制备麦芽组合物。

48.如权利要求44-47中任一项所述的方法，其中将所述组合物加工成饮料包括糖化步骤，从而产生麦芽汁组合物。

49.如权利要求44-48中任一项所述的方法，其中将所述组合物加工成饮料包括糖化步骤和喷射提取步骤，从而产生麦芽汁组合物。

50.如权利要求48和49中任一项所述的方法，其中所述糖化步骤包括糖化经碾磨的麦芽，或糖化经碾磨的大麦，或糖化经碾磨的麦芽和大麦的混合物。

51.如权利要求48-50中任一项所述的方法，其中将所述组合物加工成饮料包括发酵所述麦芽汁。

52.生产包含非常低水平的游离T2N的麦芽组合物的方法，其中所述方法包括以下步骤：

(i)提供权利要求23所述的麦粒；

(ii)浸泡所述麦粒；

(iii)在预定条件下萌芽所述经浸泡的麦粒；

(iv)用热处理所述萌芽的麦粒；

由此产生包含非常低水平的游离T2N的麦芽组合物。

53.如权利要求52所述的方法，其中与以相同方式由大麦突变体D112制备的麦芽组合物中的游离T2N相比，所述非常低水平的游离T2N为最多50％T2N，其中所述大麦突变体D112的ATCC保藏编号为PTA-5487。

54.制备大麦植物的方法，其中所述大麦植物包含导致功能性LOX-1酶完全丧失的第一突变和导致功能性LOX-2酶完全丧失的第二突变，所述方法包括以下步骤：

(i)提供功能性LOX-1完全丧失的大麦植物或其部分；和

(ii)诱变所述大麦植物，和/或来自所述大麦植物的大麦细胞，和/或大麦组织，和/或大麦粒，和/或大麦胚，由此获得M0代大麦；和

(iii)将所述诱变的大麦植物、麦粒和/或胚培育至少2代，由此获得Mx代的大麦植物，其中x为≥2的整数；和

(iv)获得所述Mx大麦植物的胚；和

(v)使所述胚萌芽；

(vi)测定所述萌芽胚或其部分中的LOX-1和LOX-2活性；和

(vii)选择所述萌芽胚中LOX-1活性和LOX-2活性完全丧失的植物；

(viii)测定LOX-1编码基因和LOX-2编码基因中是否存在突变；和

(ix)选择在LOX-1编码基因和LOX-2编码基因中具有突变的植物；

由此获得包含导致功能性LOX-1酶完全丧失的第一突变和导致功能性LOX-2酶完全丧失的第二突变的大麦植物。

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